 使用胎盤幹細胞之疼痛治療
专利摘要:
本文提供治療患有疼痛(例如神經病性疼痛)之個體之方法，其包含向該個體投與治療有效量之組織培養塑膠黏附性胎盤幹細胞(PDACTM)。 公开号:TW201311258A 申请号:TW101119674 申请日:2012-05-31 公开日:2013-03-16 发明作者:Uri Herzberg；Jodi Gurney 申请人:Anthrogenesis Corp； IPC主号:A61K35-00
专利说明:
使用胎盤幹細胞之疼痛治療 本文提供使用分離之胎盤幹細胞改善疼痛之方法及治療患有疼痛之個體之方法。 本申請案主張對以下專利之優先權：2011年6月1日申請之美國臨時專利申請案第61/492,314號、2011年10月18日申請之美國臨時專利申請案第61/548,663號及2012年2月3日申請之美國臨時專利申請案第61/594,985號，其每一者之揭示內容係全文以引用方式併入本文中。 由於哺乳動物胎盤數量巨大且通常作為醫療廢物拋棄，故其代表醫學有用幹細胞之獨特來源。醫學領域需要抑制疼痛之改良組合物及方法。因此，本文提供可用於治療疼痛之胎盤幹細胞及包含胎盤幹細胞之組合物，以及使用其治療疼痛之方法。 在一態樣中，本文提供治療個體之疼痛或異常感覺病況(例如感覺遲鈍、異常性疼痛及痛覺過敏)之方法，其包含向該個體投與治療有效量之胎盤幹細胞或藉由胎盤幹細胞條件化之培養基，其中該治療有效量係足以引起該疼痛之可檢測改善之量。在一具體實施例中，該方法包含鑑別需要緩解疼痛之個體或遭受疼痛折磨之個體。在另一具體實施例中，該方法另外包含在投與該等胎盤幹細胞之前測定該個體之一或多個第一疼痛等級，及在投與該等胎盤幹細胞之後測定該個體之一或多個第二疼痛等級，其中該治療有效量之胎盤幹細胞使得該疼痛之該一或多個第二等級與疼痛之該一或多個第一等級相比降低。在一更具體實施例中，該治療有效量之胎盤幹細胞引起該疼痛之可檢測改善，該改善強於或持續時間長於因投與安慰劑而引起之改善。在一更具體實施例中，該一或多個第一疼痛等級及該一或多個第二疼痛等級係藉由疼痛評估量表來測定。在一更具體實施例中，該疼痛評估量表係數字型疼痛強度量表(Numeric Pain Intensity Scale)；疼痛品質評估量表(Pain Quality Assessment Scale)；簡單描述型疼痛強度量表(Simple Descriptive Pain Intensity Scale)；視覺類比量表(Visual Analog Scale)；Wong-Baker臉譜型疼痛分級量表(Wong-Baker FACES Pain Rating Scale)；FLACC量表；CRIES量表；或COMFORT量表。 在另一具體實施例中，該方法另外包含在投與該等胎盤幹細胞之前測定該個體之疼痛之一或多個生理指標的第一等級，及在投與該等胎盤幹細胞之後測定該個體之疼痛之一或多個生理指標的第二等級，其中該治療有效量之胎盤幹細胞使得該第二等級與該第一等級相比降低。在一更具體實施例中，疼痛之該生理指標係個體之心跳率。在一更具體實施例中，該個體在該投與後之該心跳率低於該個體在該投與前之該心跳率。在另一更具體實施例中，疼痛之該生理指標係該個體之收縮壓(systolic)。在一更具體實施例中，該個體在該投與後之該收縮壓低於該個體在該投與前之該收縮壓。在另一更具體實施例中，疼痛之該生理指標係該個體之舒張壓(diastolic)。在一更具體實施例中，該個體在該投與後之該舒張壓低於該個體在該投與前之該舒張壓。 在治療疼痛之方法之另一實施例中，該疼痛係神經病性疼痛。在一具體實施例中，該神經病性疼痛係由糖尿病性神經病變引起。在另一具體實施例中，該神經病性疼痛係由該個體之神經損傷引起。在另一具體實施例中，該神經病性疼痛係由藥物引起。在某些具體實施例中，該藥物係或包含含鉑抗癌藥物(例如奧沙利鉑(oxaliplatin)、卡鉑(carboplatin)或順鉑(cisplatin))或另一化學治療藥物(例如太平洋紫杉醇(paclitaxel)或長春新鹼(vincristine))。在另一實施例中，神經病性疼痛係由病毒(例如病毒性疾病，例如水痘帶狀疱狀病毒、疱疹病毒(例如，單純疱疹)或人類免疫缺陷病毒(HIV))引起。在又一實施例中，疼痛係由輻射損傷(例如作為癌症治療之一部分的輻射損傷)引起。在另一具體實施例中，該神經病性疼痛係由發炎(例如神經發炎、神經炎)引起。 在治療疼痛之方法之另一實施例中，該疼痛係發炎性疼痛。在另一實施例中，該疼痛係骨疼痛。在一具體實施例中，該骨疼痛與癌症有關或係由癌症引起。在另一實施例中，該疼痛係由癌症引起。在另一實施例中，該疼痛係由外陰痛引起或與其有關。在另一實施例中，該疼痛係由間質性膀胱炎引起或與其有關。在另一實施例中，該疼痛對類固醇療法無反應。在另一實施例中，該疼痛對非類固醇抗炎療法無反應。在另一實施例中，該疼痛對類鴉片療法無反應。在另一實施例中，該疼痛對鴉片劑療法無反應。 在另一態樣中，本文提供治療有效量之胎盤幹細胞或藉由胎盤幹細胞條件化之培養基用於治療個體之疼痛，其中該治療有效量係足以引起該疼痛之可檢測改善之量。在一實施例中，該個體在該使用前之該疼痛等級及該個體在該使用後之該疼痛等級係藉由疼痛評估量表來測定，例如數字型疼痛強度量表；疼痛品質評估量表；簡單描述型疼痛強度量表；視覺類比量表；Wong-Baker臉譜型疼痛分級量表；FLACC量表；CRIES量表；或COMFORT量表。在另一實施例中，該個體在該使用前之該疼痛等級及該個體在該使用後之該疼痛等級係藉由疼痛之一或多個身體指標來測定。在一具體實施例中，疼痛之該生理指標係個體之心跳率，例如該個體之該心跳率在該使用後低於該使用前。在另一具體實施例中，疼痛之該生理指標係該個體之收縮壓，例如該個體之該收縮壓在該使用後低於該使用前。在另一具體實施例中，疼痛之該生理指標係該個體之舒張壓，例如該個體之該舒張壓在該使用後低於該使用前。在某些實施例中，該疼痛係神經病性疼痛。在一更具體實施例中，該神經病性疼痛係由糖尿病性神經病變引起。在一更具體實施例中，該神經病性疼痛係由該個體之神經損傷引起。在另一更具體實施例中，該神經病性疼痛係由發炎引起。在另一更具體實施例中，該神經病性疼痛係由藥物引起。在一更具體實施例中，該藥物係或包含含鉑抗癌藥物，例如含鉑抗癌藥物係或包含奧沙利鉑、卡鉑或順鉑。在另一具體實施例中，該藥物係或包含太平洋紫杉醇。在其他具體實施例中，該疼痛係發炎性疼痛、骨疼痛(例如，骨疼痛與癌症有關或係由癌症引起)、由癌症引起之疼痛、由外陰痛引起或與其有關之疼痛、由間質性膀胱炎引起或與其有關之疼痛或由退化性關節病(例如骨關節炎)引起之疼痛。在某些實施例中，該疼痛對類固醇療法無反應。在某些其他實施例中，該疼痛對非類固醇抗炎療法無反應。在某些其他實施例中，該疼痛對類鴉片療法無反應。在某些其他實施例中，該疼痛對非特異性或混合μ/δ類鴉片療法無反應。 在上述實施例中任一者之一具體實施例中，該等胎盤幹細胞係CD10+、CD34-及CD105+。在一更具體實施例中，該等胎盤幹細胞另外係CD200+，例如胎盤幹細胞係CD10+、CD34-、CD105+及CD200+。在一更具體實施例中，該等胎盤幹細胞另外係CD45-及CD90+。在一更具體實施例中，該等胎盤幹細胞另外係CD80-及CD86-。在其他具體實施例中，該等胎盤幹細胞表現CD200且不表現HLA-G；或表現CD73、CD105及CD200；或表現CD200及OCT-4；或表現CD73及CD105且不表現HLA-G。在本文所述胎盤幹細胞中任一者之一具體實施例中，該等胎盤幹細胞係HLA-A,B,C+。在本文實施例中任一者之具體實施例中，該等胎盤幹細胞另外係OCT-4+。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞經調配以局部投與。在某些其他實施例中，該等胎盤幹細胞經調配以全身性投與，例如靜脈內或動脈內投與。 3.1 定義 本文所用術語「約」在涉及所述數值時指示值在所述數值+/-10%範圍內。 本文所用術語「衍生」意指自……分離或以其他方式純化。舉例而言，胎盤衍生之黏附細胞係自胎盤分離。術語「衍生」涵蓋自直接自組織(例如胎盤)分離之細胞培養之細胞，及自初始分離物培養或擴增之細胞。 本文所用「免疫定位」意指在(例如)流式細胞術、螢光活化細胞分選、磁性細胞分選、原位雜交、免疫組織化學或諸如此類中使用免疫蛋白(例如抗體或其片段)檢測化合物(例如細胞標記物)。 本文所用術語「SH2」係指結合標記物CD105上之表位的抗體。因此，稱作SH2+之細胞係CD105+。 本文所用術語「SH3」及「SH4」係指結合存於標記物CD73上之表位的抗體。因此，稱作SH3+及/或SH4+之細胞係CD73+。 若在(例如)本文所用幹細胞之收集及/或培養期間，自該幹細胞移除至少50%、60%、70%、80%、90%、95%或至少99%之與該幹細胞天然結合之其他細胞，則該幹細胞「經分離」。「經分離」細胞群意指與衍生出該細胞群之組織(例如胎盤)中之其他細胞實質上分離之細胞群。在一些實施例中，若在(例如)幹細胞群之收集及/或培養期間，自該幹細胞群移除至少50%、60%、70%、80%、90%、95%或至少99%之與該幹細胞群天然結合之細胞，則(例如)該幹細胞群「經分離」。 本文所用術語「胎盤幹細胞」係指衍生自(例如分離自)哺乳動物胎盤之幹細胞或前驅細胞(與初代培養後傳代次數無關)，其黏附至組織培養基質(例如，組織培養塑膠或纖連蛋白塗佈之組織培養板)。然而，本文所用術語「胎盤幹細胞」並非係指滋養層、細胞滋養層、胚胎生殖細胞或胚胎幹細胞，如同熟習此項技術者所理解的彼等細胞那樣。若細胞保留幹細胞之至少一種屬性(例如與一或多種類型之幹細胞有關之標記物或基因表現譜；在培養中複製至少10-40次之能力；多潛能性，例如在活體外、在活體內或者兩種情況下分化為三個胚層中之一或多者之細胞之能力；缺少成體(即，已分化)細胞特徵或諸如此類)，則可將該細胞視為「幹細胞」。術語「胎盤幹細胞」與「胎盤衍生之幹細胞」可互換使用。除非本文中另外說明，否則術語「胎盤」包括臍帶。在某些實施例中，本文所揭示之胎盤幹細胞在活體外具有多潛能性(亦即，細胞在活體外在分化條件下分化)，在活體內具有多潛能性(亦即，細胞在活體內分化)，或在兩種情況下皆具有多潛能性。 如本文所用，在可檢測到特定標記物時，幹細胞對該標記物呈「陽性」。舉例而言，胎盤幹細胞對(例如)CD73呈陽性，此乃因CD73在胎盤幹細胞上可檢測，其量可檢測地大於背景(例如，與任一給定分析中之同種型對照或實驗陰性對照相比)。在可使用標記物來將細胞與至少一種其他細胞類型區分開時，或在該細胞中存在或其表現該標記物而可使用該標記物來選擇或分離該細胞時，該細胞亦對該標記物呈陽性。 本文所用「免疫調節」及「免疫調節性」意指引起或有能力引起免疫反應之可檢測變化，及引起免疫反應之可檢測變化之能力。 5.1 治療疼痛之方法 本文闡述治療疼痛之方法，其包含投與胎盤衍生之細胞，例如胎盤幹細胞，例如下文第5.4節中所述之胎盤幹細胞，或如下文實例7中所述製備之胎盤幹細胞。在具體實施例中，本文所述治療疼痛之方法中所用之胎盤幹細胞係CD10+、CD34-、CD105+及CD200+。在其他具體實施例中，本文所述治療疼痛之方法中所用之胎盤幹細胞表現ELOVL2、ST3GAL6、ST6GALNAC5及/或SLC12A8基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，本文所述方法中所用之胎盤幹細胞表現CPA4、TCF21及/或VTN基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，本文所述方法中所用之胎盤幹細胞表現B4GALT6、FLJ10781及/或NUAK1基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在一具體實施例中，該等胎盤幹細胞進一步表現Cllorf9基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。 5.1.1 治療疼痛之方法 疼痛一般定義為與實際或潛在組織傷害有關或就該傷害來闡述之使人不快之感覺或情緒經歷。Merskey H、Bogduk N編輯，Classification of Chronic Pain,International Association for the Study of Pain(IASP)Task Force on Taxonomy,IASP Press：Seattle,209-214,1994。由於對疼痛之感知高度主觀，其係最難診斷及有效治療之病理之一。 在一態樣中，本文提供治療患有疼痛之個體之方法，其包含向該個體投與治療有效量之胎盤幹細胞或藉由胎盤幹細胞條件化之培養基，其中該治療有效量係足以引起該疼痛或與該疼痛有關之症狀之可檢測改善之量。在一實施例中，該方法另外包含測定該個體之疼痛在投與該等胎盤幹細胞之前之第一等級，及測定該個體之疼痛在投與該等胎盤幹細胞之後之第二等級，其中該治療有效量之胎盤幹細胞使得該疼痛之該第二等級與疼痛之該第一等級相比降低。 在某些實施例中，與投與安慰劑相比，治療有效量之胎盤幹細胞在投與時產生更強或持續時間更長之對個體疼痛之改善。 在某些實施例中，疼痛係傷害感受性疼痛。傷害感受性疼痛通常係在組織損傷、疾病或發炎後釋放有害刺激(例如發炎化學介質)時引起，且在損傷部位由發揮正常作用之感覺受器(痛覺受器)檢測。例如，參見Koltzenburg,M.Clin.J.of Pain 16：S131-S138(2000)。傷害感受性疼痛之病因之實例包括(但不限於)化學或熱燒傷、皮膚割傷或挫傷、骨關節炎、類風濕性關節炎、肌腱炎及肌筋膜疼痛。在某些實施例中，傷害感受性疼痛係由發炎刺激。 在某些其他實施例中，疼痛係神經病性疼痛。神經病性疼痛反映對神經系統之損傷或損害，且已定義為「由神經系統中之原發性傷害或功能障礙引發或引起之疼痛」。Merskey H、Bogduk N編輯，Classification of Chronic Pain,International Association for the Study of Pain(IASP)Task Force on Taxonomy,IASP Press：Seattle,209-214,1994。在一具體實施例中，神經病性疼痛之特徵在於改變周圍神經元之興奮性。在其他具體實施例中，神經病性疼痛包括(但不限於)與糖尿病性神經病變有關之疼痛、帶狀疱疹後神經痛、三叉神經痛、發炎(例如，神經發炎、神經炎)及中風後疼痛。在某些實施例中，神經病性疼痛係連續的、間歇性的，且闡述為(例如)灼痛、麻刺感、刺痛、射痛、電擊樣、戳痛、擠壓痛、劇烈酸痛(deep aching)或痙攣。在某些其他實施例中，患有神經病性疼痛之個體另外經歷部分或完全感覺缺陷、異常或陌生的不舒適感覺(感覺遲鈍)、非傷害性刺激引起的疼痛或對超閾值刺激反應之不相稱的疼痛感知(痛覺過敏)。 在另一具體實施例中，神經病性疼痛係複雜性區域疼痛症候群(CRPS)。在一具體實施例中，CRPS在不存在神經損傷之情形下(I類CRPS)影響四肢。在一更具體實施例中，該I類CRPS包括反射性交感神經失養症(RSD)。在一更具體實施例中，該RSD係I期RSD或「早期RSD」。在早期RSD中，疼痛比根據損傷之預期更嚴重，且其具有灼痛或酸痛品質。該疼痛可因肢體下垂、身體接觸或情緒失常而加重。受影響區域通常出現水腫，可能體溫過高或體溫過低，且可能顯示指甲及毛髮生長增強。放射照片可顯示早期骨質改變。在另一更具體實施例中，該RSD係II期RSD或「已確立RSD」。在一更具體實施例中，該已確立RSD除疼痛外包含水腫組織硬結；皮膚多汗症伴隨網狀青斑或發紺；脫髮；指甲表面隆脊、龜裂或變脆；出現乾手症(dry hand)；及/或皮膚及皮下組織顯著萎縮。疼痛仍係主要特徵。在另一更具體實施例中，該RSD係III期RSD或「晚期RSD」。在一更具體實施例中，該晚期RSD包含近端擴散之疼痛；不可逆組織傷害；皮膚薄且發亮；及在放射照片上可見之骨去礦質。 在另一具體實施例中，神經病性疼痛係由藥物(例如化學治療藥物或抗癌藥物)引起之疼痛。在具體實施例中，藥物係或包含含鉑藥物、紫杉烷、埃博黴素(epothilone)、植物鹼或沙利竇邁(thalidomide)。在更具體實施例中，藥物係或包含硼替佐米(bortezomib)、卡鉑(例如，PARAPLATIN®)、順鉑(例如，PLATINOL®)、阿糖胞苷(cytarabine)(例如，CYTOSAR®、Ara-C)、克癌易(docetaxel)(例如，TAXOTERE®)、滅必治(etoposide)/VP-16(VEPESID®)、吉西他濱(gemcitabine)(例如，GEMZAR®)、HALAVEN®(甲磺酸艾日布林(eribulin mesylate))、六甲密胺(例如，HEXALIN®)、太平洋紫杉醇(例如，TAXOL®；ABRAXANETM)、奧沙利鉑(例如，ELOXATIN®)、蘇拉明(suramin)、沙利竇邁(例如，THALOMID®)、長春鹼(vinblastine)(例如，VELBAN®；ALKABAN-AQ®)、長春新鹼(例如，ONCOVIN®、VINCASAR PFS®、Vincrex)或長春瑞濱(vinorelbine)(NAVELBINE®)。 在某些其他具體實施例中，藥物係抗生素。在某些其他實施例中，藥物係他汀(statin)。 在某些其他具體實施例中，藥物係或包含氨氯地平(amlodipine)(例如，NORVASC®、Lotril或Lotrel)、阿托伐他汀(atorvastatin)(例如，LIPITOR®)、度洛西汀(duloxetine)(例如，CYMBALTA®)、普瑞巴林(pregabalin)(LYRICA®)、別嘌呤醇(allopurinol)(例如，LOPURIM®、ZYLOPRIM®)、阿米萊特(aminodipinberglate)、胺碘酮(amiodarone)(例如，CORDERONE®、PACERONE®)、阿洛地平(amiodipine)、阿米替林(amitriptyline)(例如，ELAVILTM、ENDEPTM、VANATRIPTM)、甲硝唑(metronidazole)(例如，FLAGYL®、METROGELTM)、呋喃妥因(nitrofurantoin)(例如，FURADANTIN®、MACROBID®、MACRODANTIN®、NITRO MACRO)、哌克昔林(perhexiline)、VYTORIN®、環丙沙星(ciprofloxacin)(例如，CIPRO®、PROQUIN®)、二硫龍(disulfiram)(例如，ANTABUSE)、唑吡坦(zolpidem)(例如，AMBIEN®)、丁螺環酮(buspirone)(例如，BUSPAR)、氯硝西泮(clonazepam)(例如，KLONOPIM、CEBERKLON、VALPAX)、阿普唑侖(alprazolam)(例如，XANAX®)、苯妥英(phenytoin)(DILANTIN®)、西酞普蘭(citalopram)(例如，CELEXA)、度洛西汀(例如，CYMBALTA®)、文拉法辛(venlafaxine)(例如，EFFEXOR、EFFEXOR XR®)、去甲替林(nortriptyline)(例如，AVENTYL HCL、PAMELOR)、舍曲林(sertraline)(例如，ZOLOFT®)、帕羅西汀(paroxetine)(例如，PAXIL、PAXIL CR®)、阿替洛爾(atenolol)(例如，TENORMIN、SENORMIN)、培哚普利(perindopril)(例如，ACEON)、雷米普利(altace)(例如，RAMIPRIL®)、氯沙坦鉀(losartan)(例如，COZAAR®、HYZAAR®)、鹽酸肼屈嗪(hydralazine)(例如，APRESOLINE®)、氫氯噻嗪(hydrochlorothiazide)(例如，HYDRODIURILTM、EZIDETM、HYDRO-PARTM、MICROZIDETM)、賴諾普利(lisinopril)(例如，PRINOVIL®、ZESTRIL®)、替米沙坦(telmisartan)(例如，MICARDISTM)、哌克昔林、哌唑嗪(prazosin)(例如，MINIPRESS®)、賴諾普利(例如，PRINIVIL®、ZESTRIL®)、洛伐他汀(lovastatin)(例如，ALTOCOR®、MEVACOR®)、CADUET®、羅蘇伐他汀(rosuvastatin)(例如，CRESTOR®)、氟伐他汀(fluvastatin)(例如，LESCOL®、LESCOL® XL)、辛伐他汀(simvastatin)(例如，ZOCOR®)、西立伐他汀(cerivastatin)(例如，LIPOBAYTM)、吉非羅齊(gemfibrozil)(例如，LOPID®)、普伐他汀(pravastatin)(例如，PRAVACHOL®、PRAVIGARD PACTM)、d4T(司他夫定(stavudine)，例如ZERIT®)、ddC(紮西他濱(zalcitabine)；例如HIVID®)、ddI(去羥肌苷(didanosine)，例如VIDEX® EC)、異煙肼(isoniazid)(例如，TUBIZID®)、二胺二苯碸(DDS、胺苯碸(dapsone))。 在某些實施例中，神經病性疼痛並非由藥物(例如化學治療藥物或抗癌藥物)引起之疼痛。在具體實施例中，神經病性疼痛並非由含鉑藥物、紫杉烷、埃博黴素、植物鹼或沙利竇邁引起之疼痛。在更具體實施例中，神經病性疼痛並非由以下引起之疼痛：硼替佐米、卡鉑(例如，PARAPLATIN®)、順鉑(例如，PLATINOL®)、阿糖胞苷(例如，CYTOSAR®、Ara-C)、克癌易(例如，TAXOTERE®)、滅必治/VP-16(VEPESID®)、吉西他濱(例如，GEMZAR®)、HALAVEN®(甲磺酸艾日布林)、六甲密胺(例如，HEXALIN®)、太平洋紫杉醇(例如，TAXOL®；ABRAXANETM)、奧沙利鉑(例如，ELOXATIN®)、蘇拉明、沙利竇邁(例如，THALOMID®)、長春鹼(例如，VELBAN®；ALKABAN-AQ®)、長春新鹼(例如，ONCOVIN®、VINCASAR PFS®、Vincrex)或長春瑞濱(NAVELBINE®)。 在另一具體實施例中，該CRPS在存在神經損傷之情形下(II類CRPS)影響四肢。在一更具體實施例中，該CRPS II包括灼性神經痛。在另一具體實施例中，該CRPS包括交感神經維持性疼痛症候群。在某些實施例中，CRPS之症狀包括(但不限於)疼痛、自主神經功能障礙、水腫、運動障礙、營養不良、萎縮、灼痛、異常性疼痛(輕微接觸疼痛)。在某些實施例中，CRPS相關疼痛伴隨腫脹及關節壓痛、出汗增加、對溫度敏感及/或皮膚變色。 在某些其他具體實施例中，神經病性疼痛係由膳食營養缺乏引起或與其相關之神經病性疼痛。在一更具體實施例中，膳食營養缺乏係維生素B12(鈷胺、氰鈷胺)缺乏。在另一更具體實施例中，膳食營養缺乏係維生素B6(吡哆醇、磷酸吡哆醛)缺乏。在另一更具體實施例中，膳食營養缺乏係維生素B1(硫胺素)缺乏。在另一具體實施例中，患有由營養缺乏引起之神經病性疼痛之個體已進行過減重手術。在另一具體實施例中，神經病性疼痛係由患有疼痛之個體酗酒或服用酒精引起或與其相關。 在某些實施例中，疼痛係由外陰痛引起或與其有關。外陰痛係陰門疼痛，例如由陰門或陰道感染或皮膚疾病無法解釋之疼痛。在一實施例中，外陰痛之疼痛位於陰門區域，例如前庭區域，例如陰門前庭炎或前庭痛。在另一實施例中，外陰痛之疼痛可擴展至陰蒂，例如陰蒂痛。外陰痛之病因之實例包括(但不限於)性交困難、對支配陰門之神經之損傷或刺激、發炎之遺傳素質、過敏症、自身免疫病症(例如，紅斑狼瘡或薛格連氏症候群(Sjogren's Syndrome))、感染(例如，酵母感染、HPV或細菌性陰道炎)及神經病變。外陰痛之實例性症狀包括(但不限於)在陰門、大陰唇、小陰唇或前庭上或其周圍之彌漫性疼痛或灼痛感。 在某些實施例中，疼痛係由間質性膀胱炎引起或與其有關。間質性膀胱炎(亦稱作膀胱疼痛症候群)係慢性病況，其特徵通常在於(例如)與膀胱有關之疼痛或壓力、與排尿有關之疼痛、刺激性排尿、頻尿、急尿或骨盆中之疼痛或壓力。間質性膀胱炎之病理學及發病機制尚未明確理解。然而，已提出若干可能的病因，例如血管阻塞、自身免疫、發炎、膀胱壁瘺(leaky bladder lining)、肥大細胞、應力以及遺傳、神經原及內分泌病因。在一實施例中，間質性膀胱炎之診斷可藉由(例如)骨盆疼痛及急尿/頻尿患者調查(Pelvic Pain Urgency/Frequency(PUF)Patient Survey)或KCl測試(亦稱作鉀敏感性測試)來實施。 在某些其他實施例中，疼痛係內臟痛。 在某些其他實施例中，疼痛係手術後疼痛，例如在手術期間由組織創傷導致者。 在某些其他實施例中，疼痛係混合疼痛，例如係具有傷害感受性及神經病性組份之慢性疼痛。在具體實施例中，該混合疼痛係癌症疼痛或下背疼痛。 在某些其他實施例中，疼痛係偏頭痛或來自頭痛之疼痛，例如血管性頭痛、頭痛群或中毒性頭痛。 在具體實施例中，該等與疼痛有關之症狀包括(但不限於)以下中之一或多者：自主神經功能障礙、起始運動失能(inability to initiate movement)、虛弱、震顫、肌肉痙攣、緊張不全、營養不良、萎縮、水腫、僵直、關節壓痛、出汗增加、對溫度敏感、輕微接觸(異常性疼痛)、皮膚變色、體溫過高或體溫過低、指甲及毛髮生長增強、早期骨質改變、多汗伴隨網狀青斑或發紺、脫髮、指甲表面隆脊、龜裂或變脆、乾手症、彌漫性骨質疏鬆、不可逆組織傷害、皮膚薄且發亮、關節攣縮及明顯的骨中礦物質脫除(bone demineralization)。 在某些實施例中，根據本文所述方法向個體投與胎盤幹細胞可降低個體之疼痛且不伴隨與一或多種疼痛治療指示/使用之藥物(例如加巴噴丁)有關之副作用。在一具體實施例中，根據本文所述方法使用胎盤幹細胞降低投與胎盤幹細胞之個體之疼痛，但不會引起該個體之感覺及/或運動協調缺陷。 5.1.2 疼痛評估量表 在一實施例中，投與患有疼痛之個體之胎盤幹細胞之治療有效量係可使該個體之疼痛可檢測地降低的量。該降低對該個體係可檢測的，對觀察者係可檢測的，或對二者皆係可檢測的。在本文所提供治療方法之某些實施例中，個體之疼痛等級係由該個體(例如)按照醫師之引導或作為治療前處理之一部分根據一或多種個體疼痛量表來評估。在某些其他實施例中，個體之疼痛等級係由觀察者使用一或多種觀察者疼痛量表來評估。倘若在投與胎盤幹細胞之前及之後根據該方法來評估疼痛等級，則每次評估較佳使用相同量表。在投與胎盤幹細胞之前，個體之疼痛可評估一次或一次以上(例如2、3、4或5次)，且在投與胎盤幹細胞之後可評估一次或一次以上(例如2、3、4或5次)。 在一實施例中，個體之疼痛係藉由0-10數字型疼痛強度量表來評估。在此量表中，零等於無疼痛，且10等於最嚴重疼痛。在某些實施例(例如疼痛品質評估量表)中，將疼痛分解為一個以上數字描述符，例如0-10描述疼痛感覺之「熱痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「劇痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「銳痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「鈍痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「冷痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「敏感」程度，0-10描述疼痛感覺之「壓痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「癢痛」的程度，0-10描述疼痛感覺之「射痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「麻痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「刺痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「電擊痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「絞痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「抽痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「放射痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「酸痛」程度，0-10描述疼痛感覺之「重痛」程度及/或0-10描述疼痛感覺之「不舒適」程度。 在另一實施例中，個體之疼痛係藉由簡單描述型疼痛強度量表來評估。在此量表中，疼痛闡述為(例如)「無疼痛」、「輕度疼痛」、「中度疼痛」、「重度疼痛」、「極重度疼痛」或「最嚴重的可能的疼痛(worst possible pain)」。 在另一實施例中，個體之疼痛係藉由視覺類比量表來評估。在視覺類比量表中，向個體呈現由垂直線組成之圖；線之一端標為「無疼痛」且另一端標為「最嚴重的可能的疼痛」。要求個體在線上兩端之間之一點做記號來指示該個體感受到之疼痛等級。 在另一實施例中，個體之疼痛係藉由Wong-Baker臉譜型疼痛分級量表來評估。在FACES疼痛分級量表中，疼痛等級由一系列卡通臉譜(通常有六個臉譜)來指示，其表情由高興逐漸變得愈來愈不高興。在一具體實施例中，臉譜下標有片語，例如「不疼」、「有一點疼」、「有些疼」、「甚至更疼」、「很疼」及「最疼」。在另一具體實施例中，臉譜下標有片語，例如「無疼痛」、「輕度、惱人的疼痛」、「煩人、不適、麻煩的疼痛」、「痛苦、難受的疼痛」、「劇烈、可怕、恐怖的疼痛」及「最嚴重的可能的、無法忍受的、極痛苦的疼痛」，該等片語單獨出現或伴有0之10之數字型量表。 在某些實施例中，個體之疼痛係藉由FLACC(臉、腿、活動性、哭泣及可安撫性)量表來評估。在具體實施例中，五個特徵中之每一者皆分級為(例如)0至2，其中2指示疼痛且0指示無疼痛。分數可單獨或累計使用。 在某一其他實施例中，個體之疼痛係藉由CRIES(哭泣、SaO2(血紅素飽和)所需O2、生命體徵(血壓及心跳率)增強、表情及失眠)量表來評估。在具體實施例中，五個特徵中之每一者皆分級為(例如)0至2，其中2指示疼痛且0指示無疼痛。分數可單獨或累計使用。 在某一實施例中，個體之疼痛係藉由COMFORT量表來評估，其評估九個不同特徵(機警、平靜、呼吸窘迫、哭泣、身體運動、肌肉緊張度、面部緊張、血壓及心跳率)，每一者按1-5之量表分級，其中1指示無疼痛或最小疼痛，且5指示最嚴重疼痛。分數可個別或累計使用。 5.1.3 疼痛之生理指標 本文所用「疼痛之治療」及類似術語可包含完全消除疼痛；顯著降低遭受疼痛折磨之個體之疼痛；按客觀標準(例如，心跳率、血壓、肌肉緊張度或諸如此類)可檢測地降低疼痛或疼痛之指標；或任兩者或所有三者之組合。在某些其他實施例中，可在投與胎盤幹細胞之前或之後或在兩種情況下按生理學標準(例如應力之生理學標準)來評估個體之疼痛。該等生理學標準可包括可客觀量測之標準，例如心跳率或血壓，例如心跳率或血壓與個體之無疼痛狀態相比或與預期規範(例如，120收縮壓及80舒張壓；60次心跳/分鐘)相比有所升高。該等生理學標準亦可包括或改為包括可主觀量測之標準，例如面部表情、肌肉緊張(肌肉緊張度)、出汗、發抖及諸如此類。 因此，在某些實施例中，投與患有疼痛之個體之治療有效量之胎盤幹細胞可檢測地降低該個體之心跳率，例如降低5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%或50%；心跳率自120次心跳/分鐘(bpm)或更高降低至低於110 bpm；自110 bpm或更高降低至低於100 bpm；自100 bpm或更高降低至低於90 bpm；自90 bpm或更高降低至低於80 bpm；自120 bpm或更高降低至低於100 bpm；自100 bpm以上降低至低於80 bpm；自130 bpm以上降低至低於100 bpm；自120 bpm以上降低至低於90 bpm；自110 bpm降低至低於80 bpm；或自120 bpm或更高降低至低於80 bpm。 在某些其他實施例中，治療有效量之胎盤幹細胞在投與患有疼痛之個體時可檢測地降低該個體之血壓，例如使個體之收縮壓、舒張壓或二者降低5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%或50%；使個體之收縮壓自200或更高降低至低於190；使收縮壓自190或更高降低至低於180；使收縮壓自180或更高降低至低於170；使收縮壓自170或更高降低至低於160；使收縮壓自160或更高降低至低於150；使收縮壓自150或更高降低至低於140；使收縮壓自140或更高降低至低於130；使收縮壓自200或更高降低至低於180；使收縮壓自190或更高降低至低於170；使收縮壓自180或更高降低至低於160；使收縮壓自170或更高降低至低於150；使收縮壓自160或更高降低至低於140；使收縮壓自150或更高降低至低於130；使收縮壓自200或更高降低至低於170；使收縮壓自190或更高降低至低於160；使收縮壓自180或更高降低至低於150；使收縮壓自170或更高降低至低於140；使收縮壓自160或更高降低至低於130；使收縮壓自200或更高降低至低於160；使收縮壓自190或更高降低至低於150；使收縮壓自180或更高降低至低於140；使收縮壓自200或更高降低至低於130；使收縮壓自200或更高降低至低於150；使收縮壓自190或更高降低至低於140；使收縮壓自180或更高降低至低於130；使收縮壓自200或更高降低至低於140；使收縮壓自190或更高降低至低於130；或使收縮壓自200或更高降低至低於130；使個體之舒張壓自140或更高降低至低於130；使舒張壓自130或更高降低至低於120；使舒張壓自120或更高降低至低於110；使舒張壓自110或更高降低至低於100；使舒張壓自100或更高降低至低於90；使舒張壓自140或更高降低至低於120；使舒張壓自110或更高降低至低於90；使舒張壓自140或更高降低至低於110；使舒張壓自130或更高降低至低於100；使舒張壓自120或更高降低至低於90；使舒張壓自140或更高降低至低於100；使舒張壓自130或更高降低至低於90；或使舒張壓自140或更高降低至低於90。 在某些實施例中，治療有效量之胎盤幹細胞在投與患有疼痛之個體時可檢測地降低個體之一或多種細胞介素(例如，促炎性細胞介素)之量。在一具體實施例中，根據本文所述方法向患有疼痛之個體投與胎盤幹細胞可降低個體中之IL-2、IL-6、IL-12、IL-17及/或干擾素-γ或其任一組合之量。對個體中細胞介素之降低之評估可使用業內已知之任一方法來完成，例如個體血漿中之細胞介素含量可使用(例如)ELISA來量測。 在某些實施例中，治療有效量之胎盤幹細胞在投與患有疼痛之個體時可檢測地增加個體中之一或多種細胞介素。在一具體實施例中，根據本文所述方法向患有疼痛之個體投與胎盤幹細胞可增加個體中IL-10之量。對個體細胞介素含量之升高之評估可使用業內已知之任一方法來完成，例如個體血漿中之細胞介素含量可使用(例如)ELISA來量測。 在某些實施例中，治療有效量之胎盤幹細胞在投與患有疼痛之個體時可檢測地降低個體中一或多種趨化素之量。在一具體實施例中，根據本文所述方法向患有疼痛之個體投與胎盤幹細胞可降低個體中之Ccl2、Ccl12及/或Cxcl1或其任一組合之量。對個體趨化素之評估可使用業內已知之任一方法來完成，例如個體血漿中之趨化素含量可使用(例如)ELISA來量測。 在某些實施例中，治療有效量之胎盤幹細胞在投與患有疼痛之個體時可檢測地降低個體中一或多種細胞類型之活化及/或分化。在一具體實施例中，根據本文所述方法向患有疼痛之個體投與胎盤幹細胞可降低個體中樹突細胞、T細胞及/或巨噬細胞或其任一組合之活化及/或分化。對個體中特定細胞類型之活化及/或分化之評估可使用業內已知之任一方法來完成，例如量測個體特定區域中存在之特定細胞標記物，例如量測/評估與血液中之細胞有關或與特定組織/器官中發現之細胞有關之特定細胞標記物。 5.2 對與疼痛有關或引起疼痛之發炎反應之抑制 發炎並非疼痛之唯一來源。然而，在某些實施例中，可使用胎盤幹細胞來改善與發炎相關或由發炎引起之疼痛。在一實施例中，本文提供改善個體之疼痛之方法，其包含使個體中之免疫細胞與有效量之胎盤幹細胞接觸，其中該有效量係如下之量：(1)可檢測地抑制該個體中之免疫反應，且(2)可檢測地降低該個體之疼痛。在具體實施例中，該等胎盤幹細胞在混合淋巴球反應(MLR)分析或回歸分析中可檢測地抑制T細胞增殖。該接觸可藉由(例如)以(例如)局部、全身或區域性方式(或藉由該等之組合)投與胎盤幹細胞來完成。因此，本文提供改善個體之疼痛之方法，其包含使個體中之免疫細胞與有效量之胎盤幹細胞接觸，其中該有效量係如下之量：(1)可檢測地調節(例如抑制)該個體之免疫及/或發炎反應，且(2)可檢測地降低該個體之疼痛。在一具體實施例中，使個體中之免疫細胞與有效量之胎盤幹細胞接觸降低個體中IL-2、IL-6、IL-12、IL-17及/或干擾素-γ或其任一組合之量。在另一具體實施例中，使個體中之免疫細胞與有效量之胎盤幹細胞接觸降低個體中Ccl2、Ccl12及/或Cxcl1或其任一組合之量。在另一具體實施例中，使個體中之免疫細胞與有效量之胎盤幹細胞接觸增加個體中IL-10之量。 在另一實施例中，本文提供改善個體之疼痛之方法，其包含向該個體投與有效量之胎盤幹細胞，其中該有效量係如下之量：(1)可檢測地調節(例如抑制)該個體之免疫及/或發炎反應，且(2)可檢測地降低該個體之疼痛。在具體實施例中，該等胎盤幹細胞在混合淋巴球反應(MLR)分析或回歸分析中可檢測地抑制T細胞增殖。投與可以局部、全身或區域性方式(或藉由該等之組合)來實施。在一具體實施例中，向個體投與有效量之胎盤幹細胞可降低個體中IL-2、IL-6、IL-12、IL-17及/或干擾素-γ或其任一組合之量。在另一具體實施例中，向個體投與有效量之胎盤幹細胞可降低個體中Ccl2、Ccl12及/或Cxcl1或其任一組合之量。在另一具體實施例中，向個體投與有效量之胎盤幹細胞可增加個體中IL-10之量。 本方法背景中之「免疫細胞」意指免疫系統(適應或先天)中之任一細胞，尤其T細胞及NK(自然殺手)細胞、樹突細胞及巨噬細胞。因此，在該方法之不同實施例中，使胎盤幹細胞與複數個免疫細胞接觸，其中該複數個免疫細胞係或包含複數個T細胞(例如，複數個CD3+ T細胞、CD4+ T細胞及/或CD8+ T細胞)及/或自然殺手細胞。該方法背景中之「免疫反應」可係免疫細胞對免疫細胞正常感受到之刺激之任一反應，例如對抗原之存在的反應。在不同實施例中，免疫反應可係T細胞(例如，CD3+ T細胞、CD4+ T細胞及/或CD8+ T細胞)因應外來抗原(例如存於輸液或移植物中之抗原)或因應自體抗原(如在自身免疫疾病中)之增殖。免疫反應亦可係含於移植物內之T細胞之增殖。免疫反應亦可係自然殺手(NK)細胞之任何活動、樹突細胞之成熟、T細胞之分化、使巨噬細胞偏移至M1或M2譜系中或諸如此類。 用於藉由(例如)降低發炎來降低或改善疼痛之胎盤幹細胞亦可衍生自單一物種，例如既定接受者之物種或欲降低或抑制其功能之免疫細胞之物種；或可衍生自多個物種。 在不同實施例中，該接觸足以將受疼痛折磨之個體的免疫功能(例如，T細胞因應抗原之增殖)或發炎相對於不存在胎盤幹細胞時之免疫功能抑制至少50%、60%、70%、80%、90%或95%。該活體內背景中之抑制可在活體外分析中使用(例如)個體之T細胞樣品來測定(見下文)；亦即，對於接受者個體中特定數量之胎盤幹細胞及多種免疫細胞而言，在活體外分析中之抑制程度可外推至在個體中之抑制程度。 可在(例如)MLR中測試胎盤幹細胞，該MLR包含以約10：1：2之比率組合CD4+或CD8+ T細胞、樹突細胞(DC)及胎盤幹細胞，其中T細胞經分配至子細胞中之染料(例如CFSE)染色，且其中允許T細胞增殖約6天。T細胞及/或DC細胞可得自欲治療個體，例如可為個體之自體細胞，或可係個體之同種異體細胞。若在胎盤幹細胞存在下，T細胞增殖在6天時相對於存在DC且不存在胎盤幹細胞之情形下之T細胞增殖可檢測地降低，則胎盤幹細胞具有免疫抑制性。在MLR之一實施例中，例如，可自培養物解凍或收穫胎盤幹細胞。使約20,000個胎盤幹細胞再懸浮於100 μl培養基(RPMI 1640、1 mM HEPES緩衝液、抗生素及5%儲集人類血清)中，且使其可附著至孔底2小時。CD4+及/或CD8+ T細胞係自全周圍血單核細胞Miltenyi磁珠分離。細胞經CFSE染色，且每孔添加總計100,000個T細胞(僅CD4+ T細胞、僅CD8+ T細胞或等量之CD4+及CD8+ T細胞)。使孔中之體積達到200 μl，且使MLR繼續進行。 在某些實施例中，在投與遭受疼痛折磨之個體之前測定胎盤幹細胞之抗炎活性(即，免疫抑制活性)。此可藉由(例如)測定欲投與以改善疼痛之胎盤幹細胞之樣品的免疫抑制活性來完成。此一活性可藉由(例如)在(例如)MLR或回歸分析中測試胎盤幹細胞樣品或胎盤幹細胞來測定。在一實施例中，用樣品來實施MLR，且測定胎盤幹細胞樣品在分析中顯示之免疫抑制程度。預期疼痛改善程度與胎盤幹細胞樣品之免疫抑制活性相關。因此，可使用MLR作為測定特定胎盤幹細胞群或胎盤幹細胞改善因發炎而引起之疼痛的絕對及相對能力之方法。 可改變MLR之參數以提供更多數據或最佳地測定胎盤幹細胞樣品或胎盤幹細胞進行免疫抑制且由此改善疼痛之能力。舉例而言，由於胎盤幹細胞之免疫抑制似乎與胎盤幹細胞存於分析中之數目大致成比例增強，故在一實施例中MLR可使用兩個或更多個數目之胎盤幹細胞(例如1×103、3×103、1×104及/或3×104個胎盤幹細胞/反應)來實施。分析中胎盤幹細胞數目相對於T細胞數目亦可改變。舉例而言，分析中之胎盤幹細胞及T細胞可以(例如)約10：1至約1：10(較佳約1：5)中之任一比率存在，但可使用相對較大數目之胎盤幹細胞或T細胞。 可以類似方式使用回歸分析或BTR分析。 可將胎盤幹細胞以相對於個體中免疫細胞(例如T細胞)之已知或預期數目為約10：1至約1：10、較佳約1：5之比率投與個體。然而，在非限制性實例中，可將胎盤幹細胞以約10,000：1、約1,000：1、約100：1、約10：1、約1：1、約1：10、約1：100、約1：1,000或約1：10,000之比率投與個體。一般而言，可投與約1×105至約1×108個胎盤幹細胞/公斤接受者、較佳約1×106至約1×107個胎盤幹細胞/公斤接受者以實現免疫抑制。在不同實施例中，投與個體或受試者之胎盤幹細胞包含至少、約或不超過1×105、3×105、1×106、3×106、1×107、3×107、1×108、3×108、1×109、3×109個或更多胎盤幹細胞。 胎盤幹細胞亦可與一或多種第二類型之幹細胞(例如來自骨髓之間質幹細胞)一起投與。該等第二幹細胞可與該等胎盤幹細胞以(例如)介於約1：10至約10：1之間之比率一起投與個體。 為促進胎盤幹細胞與免疫細胞在活體內接觸或接近，可藉由足以使胎盤幹細胞與免疫細胞彼此接觸之任一途徑將胎盤幹細胞投與個體。舉例而言，可以諸如以下等方式將胎盤幹細胞投與個體：靜脈內、肌內、腹膜內、眼內、非經腸、鞘內、皮下或直接投與器官(例如胰腺)。可將胎盤幹細胞投與遭受疼痛折磨之個體之疼痛部位或引起疼痛之神經傷害部位之區域。對於活體內投與，可將胎盤幹細胞調配為醫藥組合物，如下文第5.8.1.2部分中所述。 在另一態樣中，投與遭受疼痛折磨之個體之胎盤幹細胞已經遺傳改造以表現一或多種抗炎細胞介素。在一具體實施例中，該抗炎細胞介素包含IL-10。 5.3 第二治療組合物及第二療法 在治療個體之疼痛之任一上述方法中，該方法可包含投與第二治療組合物或第二療法，例如抗疼痛藥劑或療法。在一較佳實施例中，第二活性劑能緩解疼痛，抑制或調節發炎反應，提供鎮靜效應或抗神經痛效應，或確保患者舒適。 在某些實施例中，第二治療組合物包含(但不限於)類鴉片鎮痛劑、非麻醉性鎮痛劑、抗炎劑、cox-2抑制劑、α-腎上腺素受體激動劑或拮抗劑、克他明(ketamine)、麻醉劑、NMDA拮抗劑、免疫調節劑、免疫抑制劑、抗抑鬱劑、抗驚厥劑、抗高血壓劑、抗焦慮劑、鈣通道阻斷劑、肌肉鬆弛劑、皮質類固醇、高壓氧、JNK抑制劑、已知可緩解疼痛之其他治療劑及其醫藥上可接受之鹽、溶劑合物、水合物、立體異構物、晶籠化合物、前藥及藥理活性代謝物。 在某些實施例中，第二治療組合物係類鴉片。類鴉片可用於(例如)治療重度疼痛。類鴉片鎮痛劑之實例包括(但不限於)羥考酮(oxycodone，例如，OXYCONTIN®)、硫酸嗎啡(例如，MS CONTIN®、DURAMORPH®及/或ASTRAMORPH®)、麥佩裏定(meperidine，例如，DEMEROL®)及吩坦尼(fentanyl)透皮貼劑(例如，DURAGESIC®)及其他已知習用藥劑。羥考酮(例如，OXYCONTIN®)係類鴉片之長效形式且可用於(例如)CRPS之初期及後期。 非麻醉性鎮痛劑及抗炎劑可用於(例如)在妊娠及母乳哺育期間治療疼痛。非類固醇抗炎藥物(NSAID)可用於(例如)疼痛症候群之早期。抗炎劑之實例包括(但不限於)乙醯柳酸(例如，阿斯匹靈(aspirin))、伊布洛芬(ibuprofen，例如，MOTRIN®、ADVIL®或諸如此類)、酮洛芬(ketoprofen，例如，ORUVAIL®)、羅非昔布(rofecoxib，例如，VIOXX®)、萘普生鈉(naproxen sodium，例如，ANAPROX®、NAPRELAN®、NAPROSYN®或諸如此類)、酮咯酸(ketorolac，例如，ACULAR®)或其他已知習用藥劑。特異性cox-2抑制劑係塞來昔布(celecoxib，例如，CELEBREX)。 作為抗抑鬱劑之第二治療化合物之實例包括(但不限於)去甲替林(PAMELOR®)、阿米替林(ELAVIL®)、伊米帕明(imipramine，TOFRANIL®)、多慮平(doxepin，SINEQUAN®)、氯米帕明(clomipramine，ANAFRANIL®)、氟西汀(fluoxetine，PROZAC®)、舍曲林(ZOLOFT®)、萘法唑酮(nefazodone，SERZONE®)、文拉法辛(EFFEXOR®)、曲唑酮(trazodone，DESYREL®)、安非他酮(bupropion，WELLBUTRIN®)及其他已知習用藥劑。例如，參見Physicians' Desk Reference,329、1417、1831及3270(第57版，2003)。 作為抗驚厥藥物之第二治療化合物之實例包括(但不限於)卡巴馬平(carbamazepine)、奧卡西平(oxcarbazepine)、加巴噴丁(NEURONTIN®)、苯妥英、丙戊酸鈉(sodium valproate)、氯硝西泮、妥品美(topiramate)、拉莫三嗪(lamotrigine)、唑尼沙胺(zonisamide)及癲爾賓(tiagabine)。例如，參見Physicians' Desk Reference,2563(第57版，2003)。 其他第二治療化合物包括(但不限於)皮質類固醇(例如，普賴松(prednisone)、地塞米松(dexamethasone)或氫化可體松(hydrocortisone))、口服活性Ib類抗心律不整劑(例如，墨西律定(mexiletine))、鈣通道阻斷劑(例如，硝苯地平(nifedipine))、β-阻斷劑(例如，普萘洛爾(propranolol))、α-阻斷劑(例如，苯氧苄胺(phenoxybenzamine))，且α2-腎上腺素激動劑(例如，可尼丁(clonidine))亦可與免疫調節性化合物組合使用。例如，參見Physicians' Desk Reference,1979、2006及2190(第57版，2003)。 在另一具體實施例中，該第二療法包含免疫調節性化合物，其中該免疫調節性化合物係3-(4-胺基-1-側氧基-1,3-二氫異吲哚-2-基)-六氫吡啶-2,6-二酮；3-(4'胺基異吲哚啉-1'-酮)-1-六氫吡啶-2,6-二酮；4-(胺基)-2-(2,6-二側氧基(3-六氫吡啶基))-異吲哚啉-1,3-二酮；或α-(3-胺基鄰苯二甲醯亞胺基)戊二醯亞胺。在一更具體實施例中，該免疫調節性化合物係具有以下結構之化合物 其中X及Y中之一者係C=O，X及Y中之另一者係C=O或CH2，且R2係氫或低碳烷基或其醫藥上可接受之鹽、水合物、溶劑合物、晶籠化合物、鏡像異構物、非鏡像異構物、外消旋物或立體異構物之混合物。在另一更具體實施例中，該免疫調節性化合物係具有以下結構之化合物 其中X及Y中之一者係C=O且另一者係CH2或C=O；R1係H、(C1-C8)烷基、(C3-C7)環烷基、(C2-C8)烯基、(C2-C8)炔基、苄基、芳基、(C0-C4)烷基-(C1-C6)雜環烷基、(C0-C4)烷基-(C2-C5)雜芳基、C(O)R3、C(S)R3、C(O)OR4、(C1-C8)烷基-N(R6)2、(C1-C8)烷基-OR5、(C1-C8)烷基-C(O)OR5、C(O)NHR3、C(S)NHR3、C(O)NR3R3'、C(S)NR3R3'或(C1-C8)烷基-O(CO)R5；R2係H、F、苄基、(C1-C8)烷基、(C2-C8)烯基或(C2-C8)炔基；R3及R3'獨立地為(C1-C8)烷基、(C3-C7)環烷基、(C2-C8)烯基、(C2-C8)炔基、苄基、芳基、(C0-C4)烷基-(C1-C6)雜環烷基、(C0-C4)烷基-(C2-C5)雜芳基、(C0-C8)烷基-N(R6)2、(C1-C8)烷基-OR5、(C1-C8)烷基-C(O)OR5、(C1-C8)烷基-O(CO)R5或C(O)OR5；R4係(C1-C8)烷基、(C2-C8)烯基、(C2-C8)炔基、(C1-C4)烷基-OR5、苄基、芳基、(C0-C4)烷基-(C1-C6)雜環烷基或(C0-C4)烷基-(C2-C5)雜芳基；R5係(C1-C8)烷基、(C2-C8)烯基、(C2-C8)炔基、苄基、芳基或(C2-C5)雜芳基；R6在每次出現時獨立地為H、(C1-C8)烷基、(C2-C8)烯基、(C2-C8)炔基、苄基、芳基、(C2-C5)雜芳基或(C0-C8)烷基-C(O)O-R5，或R6基團可接合形成雜環烷基；n為0或1；且*代表對掌性碳中心；或其醫藥上可接受之鹽、水合物、溶劑合物、晶籠化合物、鏡像異構物、非鏡像異構物、外消旋物或立體異構物之混合物。在另一更具體實施例中，該免疫調節性化合物係具有以下結構之化合物 其中：X及Y中之一者係C=O且另一者係CH2或C=O；R係H或CH2OCOR'；(i)R1、R2、R3或R4中之每一者彼此獨立地為鹵基、1至4個碳原子之烷基或1至4個碳原子之烷氧基，或(ii)R1、R2、R3或R4中之一者係硝基或-NHR5且R1、R2、R3或R4中之其餘幾者係氫；R5係氫或1至8個碳之烷基；R6係氫、1至8個碳原子之烷基、苯并基、氯或氟；R'係R7-CHR10-N(R8R9)；R7係間伸苯基或對伸苯基或-(CnH2n)-，其中n具有0至4之值；R8及R9中之每一者彼此獨立地係氫或1至8個碳原子之烷基，或R8及R9一起係四亞甲基、五亞甲基、六亞甲基或-CH2CH2X1CH2CH2-，其中X1係-O-、-S-或-NH-；R10係氫、1至8個碳原子之烷基或苯基；且*代表對掌性碳中心；或其醫藥上可接受之鹽、水合物、溶劑合物、晶籠化合物、鏡像異構物、非鏡像異構物、外消旋物或立體異構物之混合物。在具體實施例中，第二治療化合物係來那度胺(lenalidomide)或普馬度胺(pomalidomide)。 可投與上述治療劑之任一組合。該等治療劑可以與胎盤幹細胞之任一組合在同時或作為單獨療程來投與。 應注意，一些上文所列示第二治療化合物(例如，氟西汀)儘管具有有益效應，但自身可能作為副作用在少量接受者中引起神經病性疼痛。一般而言，可認為該等化合物可安全投與；然而，熟習此項技術者(例如，醫師)將能確定投與此一第二治療化合物與進一步引起神經病性疼痛之風險相比之相對益處。 可將胎盤幹細胞以醫藥組合物形式(例如適於靜脈內、肌內或腹膜內注射之醫藥組合物)投與遭受疼痛折磨之個體。可將胎盤幹細胞以單一劑量或以多次劑量投與個體。倘若以多次劑量投與胎盤幹細胞，則該等劑量可係設計用於緩解疼痛之治療方案的一部分，或可係設計用於治療疼痛之潛在病因之長期治療方案的一部分。在將胎盤幹細胞與第二治療劑一起投與或與第二類型之幹細胞一起投與之實施例中，胎盤幹細胞及第二治療劑及/或第二類型之幹細胞可在同時或不同時間投與，例如投與可彼此相隔在1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、20、30、40或50分鐘內或彼此相隔1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、12、14、16、18、20或22小時或彼此相隔在1、2、3、4、5、6、7、8、9或10天或更長時間內。 5.4 胎盤幹細胞及胎盤幹細胞群 本文所提供治療患有疼痛之個體或改善個體之疼痛之方法包含將胎盤幹細胞投與遭受疼痛折磨之個體。在某些實施例中，胎盤幹細胞亦以足夠數目具有在混合淋巴球反應分析或回歸分析中可檢測地抑制免疫功能(例如CD4+及/或CD8+ T細胞之增殖)之能力。 胎盤幹細胞可源自胎兒或母體(亦即，可具有母體或胎兒之基因型)。胎盤幹細胞群或包含胎盤幹細胞之細胞群可包含僅源自胎兒或母體之胎盤幹細胞，或可包含源自胎兒及母體二者之混合胎盤幹細胞群。胎盤幹細胞及包含胎盤幹細胞之細胞群可藉由下文論述之形態、標記物及培養特徵來鑑別及選擇。 5.4.1 物理及形態特徵 如本文所述使用之胎盤幹細胞當在初代培養或在細胞培養中培養時黏附至組織培養基質，例如組織培養容器表面(例如，組織培養塑膠)。培養物中之胎盤幹細胞呈一般纖維母細胞樣星形外觀，其中自中心細胞體延伸出多個細胞質突起。然而，可在形態上區分胎盤幹細胞與在相同條件下培養之纖維母細胞，此乃因胎盤幹細胞展現比纖維母細胞更大量之該等突起。在形態上，亦可區分胎盤幹細胞與造血幹細胞，造血幹細胞在培養物中一般呈更圓的形態或卵石形態。 5.4.2 細胞表面、分子及遺傳標記物 可用於本文所揭示方法(例如治療疼痛之方法)中之分離之胎盤幹細胞(例如分離之多潛能性胎盤幹細胞)及該等分離之胎盤幹細胞之群係組織培養塑膠黏附性人類胎盤幹細胞，其具有多潛能性細胞或幹細胞之特徵，且表現複數個可用於鑑別及/或分離該等細胞或包含該等幹細胞之細胞群之標記物。本文所述之分離之胎盤幹細胞及胎盤細胞群(例如，兩種或更多種分離之胎盤幹細胞)包括直接自胎盤獲得之胎盤幹細胞及含有胎盤細胞之細胞群或其任一部分(例如，絨毛膜、胎盤絨毛葉或諸如此類)。分離之胎盤細胞群亦包括培養物中之分離之胎盤幹細胞群(亦即，兩種或更多種)，及容器(例如袋)中之群。本文所述分離之胎盤幹細胞並非骨髓衍生之間葉細胞、脂肪衍生之間質幹細胞或得自臍帶血、胎盤血或周圍血之間葉細胞。可用於本文所述方法及組合物中之胎盤細胞(例如胎盤多潛能性細胞及胎盤幹細胞)闡述於本文中及(例如)以下文獻中：美國專利第7,311,904號；第7,311,905號；及第7,468,276號；及美國專利申請公開案第2007/0275362號，其揭示內容係全文以引用方式併入本文中。 在某些實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD34-、CD10+及CD105+，如藉由流式細胞術所檢測。在另一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞有可能分化成神經表現型之細胞、骨原性表現型之細胞及/或軟骨形成性表現型之細胞。在另一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD200+，即胎盤幹細胞係CD10+、CD34-、CD105+及CD200+。在另一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD45-或CD90+。在另一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD45-及CD90+，如藉由流式細胞術所檢測。在另一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞另外係CD90+或CD45-，如藉由流式細胞術所檢測。在另一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞另外係CD90+及CD45-，如藉由流式細胞術所檢測，即該等細胞係CD34-、CD10+、CD45-、CD90+、CD105+及CD200+。在另一具體實施例中，該等CD34-、CD10+、CD45-、CD90+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞另外係CD80-及CD86-。在本文任一實施例之某些具體實施例中，胎盤幹細胞另外係OCT-4+。 分離之胎盤幹細胞一般不表現α平滑肌肌動蛋白(αSMA)。分離之胎盤幹細胞一般表現MHC I類分子，例如HLA-A,B,C。 在某些實施例中，該等胎盤幹細胞係CD34-、CD10+、CD105+及CD200+，以及以下中之一或多者：CD38-、CD45-、CD80-、CD86-、CD133-、MHC II-類(例如，HLA-DR、DP、DQ-)、SSEA3-、SSEA4-、CD29+、CD44+、CD73+、CD90+、CD105+、HLA-A,B,C+、PDL1+、ABC-p+及/或OCT-4+，如藉由流式細胞術所檢測。在其他實施例中，上文所述CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞中之任一者另外係以下中之一或多者：CD29+、CD38-、CD44+、CD54+、SH3+或SH4+。在另一具體實施例中，胎盤幹細胞另外係CD44+。在上文分離之CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞中任一者之另一具體實施例中，該等細胞另外係以下中之一或多者：CD117-、CD133-、KDR-(VEGFR2-)、HLA-A,B,C+、HLA-DP、DQ、DR-或程式化死亡-1配體(PDL1)+或其任一組合。 在另一實施例中，CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞另外係以下中之一或多者：CD13+、CD29+、CD33+、CD38-、CD44+、CD45-、CD54+、CD62E-、CD62L-、CD62P-、SH3+(CD73+)、SH4+(CD73+)、CD80-、CD86-、CD90+、SH2+(CD105+)、CD106/VCAM+、CD117-、CD144/VE-鈣黏著素低、CD184/CXCR4-、CD200+、CD133-、OCT-4+、SSEA3-、SSEA4-、ABC-p+、KDR-(VEGFR2-)、HLA-A,B,C+、HLA-DP、DQ、DR-、HLA-G-或程式化死亡-1配體(PDL1)+或其任一組合。在另一實施例中，CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD13+、CD29+、CD33+、CD38-、CD44+、CD45-、CD54/ICAM+、CD62E-、CD62L-、CD62P-、SH3+(CD73+)、SH4+(CD73+)、CD80-、CD86-、CD90+、SH2+(CD105+)、CD106/VCAM+、CD117-、CD144/VE-鈣黏著素低、CD184/CXCR4-、CD200+、CD133-、OCT-4+、SSEA3-、SSEA4-、ABC-p+、KDR-(VEGFR2-)、HLA-A,B,C+、HLA-DP、DQ、DR-、HLA-G-及程式化死亡-1配體(PDL1)+。 在另一具體實施例中，本文所述胎盤幹細胞中之任一者另外係ABC-p+，如藉由流式細胞術所檢測；或係OCT-4+(POU5F1+)，如藉由逆轉錄酶聚合酶鏈式反應(RT-PCR)所測定，其中ABC-p係胎盤特異性ABC轉運蛋白(亦稱作乳癌耐藥蛋白(BCRP)或稱作米托蒽醌(mitoxantrone)耐藥蛋白(MXR))，且OCT-4係八聚物-4蛋白(POU5F1)。在另一具體實施例中，本文所述胎盤幹細胞中之任一者另外係SSEA3-或SSEA4-，如藉由流式細胞術所測定，其中SSEA3係階段特異性胚胎抗原3，且SSEA4係階段特異性胚胎抗原4。在另一具體實施例中，本文所述胎盤幹細胞中之任一者另外係SSEA3-及SSEA4-。 在另一具體實施例中，本文所述胎盤幹細胞中之任一者係或另外係以下中之一或多者：MHC-I+(例如，HLA-A,B,C+)、MHC-II-(例如，HLA-DP、DQ、DR-)或HLA-G-。在另一具體實施例中，本文所述胎盤幹細胞中之任一者另外係MHC-I+(例如，HLA-A,B,C+)、MHC-II-(例如，HLA-DP、DQ、DR-)及HLA-G-。 本文亦提供分離之胎盤幹細胞群或包含(例如富集)分離之胎盤幹細胞之細胞群(例如胎盤細胞群)，其可用於本文所揭示之方法及組合物中。較佳細胞群係彼等包含分離之胎盤幹細胞者，其中該等細胞群包含(例如)至少10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%或98%之分離之CD10+、CD105+及CD34-胎盤幹細胞；亦即，該群中至少10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%或98%之細胞係分離之CD10+、CD105+及CD34-胎盤幹細胞。在一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD200+。在另一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞另外係CD90+或CD45-，如藉由流式細胞術所檢測。在另一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞另外係CD90+及CD45-，如藉由流式細胞術所檢測。在另一具體實施例中，上述分離之CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞中之任一者另外係以下中之一或多者：CD29+、CD38-、CD44+、CD54+、SH3+或SH4+。在另一具體實施例中，分離之CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞或分離之CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞另外係CD44+。在上文包含分離之CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞之任一細胞群之一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞另外係以下中之一或多者：CD13+、CD29+、CD33+、CD38-、CD44+、CD45-、CD54+、CD62E-、CD62L-、CD62P-、SH3+(CD73+)、SH4+(CD73+)、CD80-、CD86-、CD90+、SH2+(CD105+)、CD106/VCAM+、CD117-、CD144/VE-鈣黏著素低、CD184/CXCR4-、CD200+、CD133-、OCT-4+、SSEA3-、SSEA4-、ABC-p+、KDR-(VEGFR2-)、HLA-A,B,C+、HLA-DP、DQ、DR-、HLA-G-或程式化死亡-1配體(PDL1)+或其任一組合。在另一具體實施例中，CD34-、CD10+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD13+、CD29+、CD33+、CD38-、CD44+、CD45-、CD54/ICAM+、CD62E-、CD62L-、CD62P-、SH3+(CD73+)、SH4+(CD73+)、CD80-、CD86-、CD90+、SH2+(CD105+)、CD106/VCAM+、CD117-、CD144/VE-鈣黏著素低、CD184/CXCR4-、CD200+、CD133-、OCT-4+、SSEA3-、SSEA4-、ABC-p+、KDR-(VEGFR2-)、HLA-A,B,C+、HLA-DP、DQ、DR-、HLA-G-及程式化死亡-1配體(PDL1)+。 在某些實施例中，該細胞群中之分離之胎盤幹細胞係以下中之一或多者或全部：CD10+、CD29+、CD34-、CD38-、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SH2+、SH3+、SH4+、SSEA3-、SSEA4-、OCT-4+及ABC-p+，其中該等分離之胎盤幹細胞係藉由物理及/或酶促破碎胎盤組織來獲得。在一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+及ABC-p+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+及CD34-，其中該等分離之胎盤幹細胞具有以下特徵中之至少一者：CD10+、CD29+、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SH3+、SH4+、SSEA3-及SSEA4-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+、CD34-、CD10+、CD29+、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SH3+、SH4+、SSEA3-及SSEA4-。在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+、CD34-、SSEA3-及SSEA4-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+及CD34-，且係SH2+或SH3+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+、CD34-、SH2+及SH3+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+、CD34-、SSEA3-及SSEA4-，且係SH2+或SH3+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+及CD34-以及SH2+或SH3+，且係以下中之至少一者：CD10+、CD29+、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SSEA3-或SSEA4-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+、CD34-、CD10+、CD29+、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SSEA3-及SSEA4-，且係SH2+或SH3+。 在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係SH2+、SH3+、SH4+及OCT-4+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD10+、CD29+、CD44+、CD54+、CD90+、CD34-、CD45-、SSEA3-或SSEA4-。在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係SH2+、SH3+、SH4+、SSEA3-及SSEA4-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係SH2+、SH3+、SH4+、SSEA3-及SSEA4-、CD10+、CD29+、CD44+、CD54+、CD90+、OCT-4+、CD34-或CD45-。 在另一實施例中，可用於本文所揭示之方法及組合物中之分離之胎盤幹細胞係CD10+、CD29+、CD34-、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SH2+、SH3+及SH4+；其中該等分離之胎盤幹細胞另外係以下中之一或多者：OCT-4+、SSEA3-或SSEA4-。 在某些實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD200+或HLA-G-。在一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD200+及HLA-G-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞另外係CD73+及CD105+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該等胎盤幹細胞係CD34-、CD38-、CD45-、CD73+及CD105+。在另一具體實施例中，在允許形成類胚胎體之條件下，該等分離之CD200+或HLA-G-胎盤幹細胞促進在包含分離之胎盤幹細胞之胎盤細胞群中形成類胚胎體。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係自並非該等胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞係自不顯示此標記物組合之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群包含(例如富集)CD200+、HLA-G-胎盤幹細胞之細胞群。在一具體實施例中，該群係胎盤細胞群。在不同實施例中，該細胞群中至少約10%、至少約20%、至少約30%、至少約40%、至少約50%或至少約60%之細胞係分離之CD200+、HLA-G-胎盤幹細胞。較佳地，該細胞群中至少約70%之細胞係分離之CD200+、HLA-G-胎盤幹細胞。更佳地，至少約90%、95%或99%之該等細胞係分離之CD200+、HLA-G-胎盤幹細胞。在細胞群之一具體實施例中，該等分離之CD200+、HLA-G-胎盤幹細胞亦係CD73+及CD105+。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、HLA-G-胎盤幹細胞亦係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、HLA-G-胎盤幹細胞亦係CD34-、CD38-、CD45-、CD73+及CD105+。在另一實施例中，該細胞群當在允許形成類胚胎體之條件下培養時產生一或多個類胚胎體。在另一具體實施例中，該細胞群係自並非胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、HLA-G-胎盤幹細胞係自不顯示該等標記物之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之分離之胎盤幹細胞係CD73+、CD105+及CD200+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係HLA-G-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD34-、CD38-、CD45-及HLA-G-。在另一具體實施例中，當在允許形成類胚胎體之條件下培養包含分離之胎盤幹細胞之胎盤細胞群時，分離之CD73+、CD105+及CD200+胎盤幹細胞促進在該群中形成一或多個類胚胎體。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係自並非分離之胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係自不顯示該等標記物之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群係包含(例如富集)分離之CD73+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞之細胞群。在不同實施例中，該細胞群中至少約10%、至少約20%、至少約30%、至少約40%、至少約50%或至少約60%之細胞係分離之CD73+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞。在另一實施例中，該細胞群中至少約70%之該等細胞係分離之CD73+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞。在另一實施例中，該細胞群中至少約80%、90%、95%或99%之細胞係分離之CD73+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞。在該等群之一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係HLA-G-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-、CD45-及HLA-G-。在另一具體實施例中，當在允許形成類胚胎體之條件下培養時，該細胞群產生一或多個類胚胎體。在另一具體實施例中，該胎盤幹細胞群係自並非胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該胎盤幹細胞群係自不顯示該等特徵之胎盤細胞分離。 在某些其他實施例中，分離之胎盤幹細胞係以下中之一或多者：CD10+、CD29+、CD34-、CD38-、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SH2+、SH3+、SH4+、SSEA3-、SSEA4-、OCT-4+、HLA-G-或ABC-p+。在一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD10+、CD29+、CD34-、CD38-、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SH2+、SH3+、SH4+、SSEA3-、SSEA4-及OCT-4+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD10+、CD29+、CD34-、CD38-、CD45-、CD54+、SH2+、SH3+及SH4+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD10+、CD29+、CD34-、CD38-、CD45-、CD54+、SH2+、SH3+、SH4+及OCT-4+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD10+、CD29+、CD34-、CD38-、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、HLA-G-、SH2+、SH3+、SH4+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+及ABC-p+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係SH2+、SH3+、SH4+及OCT-4+。在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+、CD34-、SSEA3-及SSEA4-。在一具體實施例中，該等分離之OCT-4+、CD34-、SSEA3-及SSEA4-胎盤幹細胞另外係CD10+、CD29+、CD34-、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SH2+、SH3+及SH4+。在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+及CD34-以及SH3+或SH4+。在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD34-及CD10+、CD29+、CD44+、CD54+、CD90+或OCT-4+。 在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD200+及OCT-4+。在一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD73+及CD105+。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞係HLA-G-。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞係CD34-、CD38-、CD45-、CD73+、CD105+及HLA-G-。在另一具體實施例中，當在允許形成類胚胎體之條件下培養包含胎盤幹細胞之胎盤細胞群時，分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞促進該群形成一或多個類胚胎體。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞係自並非該等胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞係自不顯示該等特徵之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群係包含(例如富集)CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞之細胞群。在不同實施例中，該細胞群中至少約10%、至少約20%、至少約30%、至少約40%、至少約50%或至少約60%之細胞係分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞。在另一實施例中，至少約70%之該等細胞係該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞。在另一實施例中，該細胞群中至少約80%、90%、95%或99%之細胞係該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞。在分離之群之一具體實施例中，該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD73+及CD105+。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞另外係HLA-G-。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-、CD45-、CD73+、CD105+及HLA-G-。在另一具體實施例中，當在允許形成類胚胎體之條件下培養時，細胞群產生一或多個類胚胎體。在另一具體實施例中，該細胞群係自並非分離之CD200+、OCT-4+胎盤細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該細胞群係自不顯示該等標記物之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之分離之胎盤幹細胞係CD73+、CD105+及HLA-G-。在另一具體實施例中，分離之CD73+、CD105+及HLA-G-胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞另外係OCT-4+。在另一具體實施例中，分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞另外係CD200+。在另一具體實施例中，分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-、CD45-、OCT-4+及CD200+。在另一具體實施例中，當在允許形成類胚胎體之條件下培養包含該等胎盤幹細胞之胎盤細胞群時，分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞促進在該群中形成類胚胎體。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞係自並非分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞係自不顯示該等標記物之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群係包含(例如富集)分離之CD73+、CD105+及HLA-G-胎盤幹細胞之細胞群。在不同實施例中，該細胞群中至少約10%、至少約20%、至少約30%、至少約40%、至少約50%或至少約60%之細胞係分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞。在另一實施例中，該細胞群中至少約70%之細胞係分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞。在另一實施例中，該細胞群中至少約90%、95%或99%之細胞係分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞。在上文各群之一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞另外係OCT-4+。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞另外係CD200+。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-、CD45-、OCT-4+及CD200+。在另一具體實施例中，該細胞群係自並非CD73+、CD105+、HLA-G-胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該細胞群係自不顯示該等標記物之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係CD73+及CD105+且當在允許形成類胚胎體之條件下培養包含該等CD73+、CD105+細胞之分離之胎盤細胞群時，該等分離之胎盤幹細胞促進在該群中形成一或多個類胚胎體。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞另外係OCT-4+。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞另外係OCT-4+、CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞係自並非該等細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞係自不顯示該等特徵之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群係包含(例如富集)分離之胎盤幹細胞之細胞群，該等分離之胎盤幹細胞係CD73+、CD105+且當在允許形成類胚胎體之條件下培養包含該等細胞之分離之胎盤細胞群時，該等分離之胎盤幹細胞促進在該群中形成一或多個類胚胎體。在不同實施例中，該細胞群中至少約10%、至少約20%、至少約30%、至少約40%、至少約50%或至少約60%之細胞係該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞。在另一實施例中，該細胞群中至少約70%之細胞係該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞。在另一實施例中，該細胞群中至少約80%、90%、95%或99%之細胞係該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞。在上文各群之一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞另外係OCT-4+。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD200+。在另一具體實施例中，該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-、CD45-、OCT-4+及CD200+。在另一具體實施例中，該細胞群係自並非該等分離之CD73+、CD105+胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該細胞群係自不顯示該等標記物之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係OCT-4+且當在允許形成類胚胎體之條件下培養包含該等胎盤幹細胞之分離之胎盤細胞群時，該等分離之胎盤幹細胞促進在該細胞群中形成一或多個類胚胎體。在一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD73+及CD105+。在另一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD200+。在另一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD73+、CD105+、CD200+、CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞係自並非OCT-4+胎盤細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞係自不顯示該等特徵之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群係包含(例如富集)分離之胎盤幹細胞之細胞群，該等分離之胎盤幹細胞係OCT-4+且當在允許形成類胚胎體之條件下培養包含該等細胞之分離之胎盤細胞群時，促進在該群中形成一或多個類胚胎體。在不同實施例中，該細胞群中至少約10%、至少約20%、至少約30%、至少約40%、至少約50%或至少約60%之細胞係該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞。在另一實施例中，該細胞群中至少約70%之細胞係該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞。在另一實施例中，該細胞群中至少約80%、90%、95%或99%之細胞係該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞。在上文各群之一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-或CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD73+及CD105+。在另一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD200+。在另一具體實施例中，該等分離之OCT-4+胎盤幹細胞另外係CD73+、CD105+、CD200+、CD34-、CD38-及CD45-。在另一具體實施例中，該細胞群係自並非該等胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該細胞群係自不顯示該等標記物之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之分離之胎盤幹細胞係分離之HLA-A,B,C+、CD45-、CD133-及CD34-胎盤幹細胞。在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群係包含分離之胎盤幹細胞之細胞群，其中該細胞群中至少約70%、至少約80%、至少約90%、至少約95%或至少約99%之細胞係分離之HLA-A,B,C+、CD45-、CD133-及CD34-胎盤幹細胞。在一具體實施例中，該分離之胎盤細胞或分離之胎盤細胞群係自並非HLA-A,B,C+、CD45-、CD133-及CD34-胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞並非源自母體。在另一具體實施例中，該分離之胎盤幹細胞群實質上不含母體組份；例如該分離之胎盤幹細胞群中至少約40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、98%或99%之該等細胞並非源自母體。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中分離之胎盤幹細胞係分離之CD10+、CD13+、CD33+、CD45-、CD117-及CD133-胎盤幹細胞。在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群係包含分離之胎盤幹細胞之細胞群，其中該細胞群中至少約70%、至少約80%、至少約90%、至少約95%或至少約99%之細胞係分離之CD10+、CD13+、CD33+、CD45-、CD117-及CD133-胎盤幹細胞。在一個特定實施例中，該等分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群係自並非該等分離之胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一特定實施例中，該等分離之CD10+、CD13+、CD33+、CD45-、CD117-及CD133-胎盤幹細胞並非源自母體，即具有胎兒基因型。在另一特定實施例中，該分離之胎盤幹細胞群中至少約40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、90%、85%、80%、95%、98%或99%之該等細胞並非源自母體。在另一特定實施例中，該等分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群係自不顯示該等特徵之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係分離之CD10+、CD33-、CD44+、CD45-及CD117-胎盤細胞。在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群係包含(例如富含)分離之胎盤細胞之細胞群，其中該細胞群中至少約70%、至少約80%、至少約90%、至少約95%或至少約99%之細胞係分離之CD10+、CD33-、CD44+、CD45-及CD117-胎盤細胞。在一個特定實施例中，該分離之胎盤細胞或分離之胎盤細胞群係自並非該等細胞之胎盤細胞分離。在另一特定實施例中，該等分離之胎盤細胞並非源自母體。在另一特定實施例中，該細胞群中至少約40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、98%或99%之該等胎盤幹細胞並非源自母體。在另一特定實施例中，該等分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群係自不顯示該等標記物之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之分離之胎盤幹細胞係分離之CD10+、CD13-、CD33-、CD45-及CD117-胎盤幹細胞。在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群係包含(例如富集)分離之CD10+、CD13-、CD33-、CD45-及CD117-胎盤幹細胞之細胞群，其中該群中至少約70%、至少約80%、至少約90%、至少約95%或至少約99%之細胞係CD10+、CD13-、CD33-、CD45-及CD117-胎盤幹細胞。在一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群係自並非該等胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤細胞並非源自母體。在另一具體實施例中，該細胞群中至少約40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、90%、85%、90%、95%、98%或99%之該等細胞並非源自母體。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群係自不顯示該等特徵之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之分離之胎盤幹細胞係HLA A,B,C+、CD45-、CD34-及CD133-，且另外係CD10+、CD13+、CD38+、CD44+、CD90+、CD105+、CD200+及/或HLA-G-及/或對CD117呈陰性。在另一實施例中，可用於本文所述方法中之細胞群係包含分離之胎盤幹細胞之細胞群，其中該群中至少約20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、98%或約99%之細胞係分離之胎盤幹細胞，其係HLA A,B,C-、CD45-、CD34-、CD133-，且其另外對CD10、CD13、CD38、CD44、CD90、CD105、CD200呈陽性及/或對CD117及/或HLA-G呈陰性。在一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群係自並非該等胎盤幹細胞之胎盤細胞分離。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞並非源自母體。在另一具體實施例中，該細胞群中至少約40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、90%、85%、90%、95%、98%或99%之該等胎盤幹細胞並非源自母體。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群係自不顯示該等特徵之胎盤細胞分離。 在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係分離之胎盤幹細胞，其係CD200+及CD10+，如藉由抗體結合來測定，且係CD117-，如藉由抗體結合及RT-PCR二者來測定。在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係分離之胎盤幹細胞，其係CD10+、CD29-、CD54+、CD200+、HLA-G-、MHC I+類及β-2-微球蛋白+。在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之分離之胎盤幹細胞係胎盤幹細胞，其中至少一種細胞標記物之表現係等量間質幹細胞(例如骨髓衍生之間質幹細胞)之至少兩倍。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞並非源自母體。在另一具體實施例中，該細胞群中至少約40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、90%、85%、90%、95%、98%或99%之該等細胞並非源自母體。 在另一實施例中，分離之胎盤幹細胞係分離之胎盤幹細胞，其係以下中之一或多者：CD10+、CD29+、CD44+、CD45-、CD54/ICAM+、CD62E-、CD62L-、CD62P-、CD80-、CD86-、CD103-、CD104-、CD105+、CD106/VCAM+、CD144/VE-鈣黏著素低、CD184/CXCR4-、β2-微球蛋白低、MHC-I低、MHC-II-、HLA-G低及/或PDL1低。在一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞至少係CD29+及CD54+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞至少係CD44+及CD106+。在另一具體實施例中，分離之胎盤幹細胞至少係CD29+。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之細胞群包含分離之胎盤幹細胞，且該細胞群中至少50%、60%、70%、80%、90%、95%、98%或99%之細胞係分離之胎盤幹細胞，其係以下中之一或多者：CD10+、CD29+、CD44+、CD45-、CD54/ICAM+、CD62-E-、CD62-L-、CD62-P-、CD80-、CD86-、CD103-、CD104-、CD105+、CD106/VCAM+、CD144/VE-鈣黏著素dim、CD184/CXCR4-、β2-微球蛋白dim、HLA-Idim、HLA-II-、HLA-Gdim及/或PDL1dim胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該細胞群中至少50%、60%、70%、80%、90%、95%、98%或99%之細胞係CD10+、CD29+、CD44+、CD45-、CD54/ICAM+、CD62-E-、CD62-L-、CD62-P-、CD80-、CD86-、CD103-、CD104-、CD105+、CD106/VCAM+、CD144/VE-鈣黏著素dim、CD184/CXCR4-、β2-微球蛋白dim、MHC-Idim、MHC-II-、HLA-Gdim及PDL1dim胎盤幹細胞。在某些實施例中，在藉由干擾素γ(IFN-γ)誘導時，胎盤幹細胞表現HLA-II標記物。 在另一實施例中，可用於本文所述方法及組合物中之分離之胎盤幹細胞係分離之胎盤幹細胞，其係以下中之一或多者或全部：CD10+、CD29+、CD34-、CD38-、CD44+、CD45-、CD54+、CD90+、SH2+、SH3+、SH4+、SSEA3-、SSEA4-、OCT-4+及ABC-p+，其中ABC-p係胎盤特異性ABC轉運蛋白(亦稱作乳癌耐藥蛋白(BCRP)或稱作米托蒽醌耐藥蛋白(MXR))，其中該等分離之胎盤幹細胞係藉由灌注已排出臍帶血且經灌注以移除殘留血液之哺乳動物(例如人類)胎盤來獲得。 在上文實施例中任一者之另一具體實施例中，所列舉細胞標記物(例如，分化簇或免疫原性標記物)之表現係藉由流式細胞術來測定。在另一具體實施例中，標記物之表現係藉由RT-PCR來測定。 基因剖析確認，分離之胎盤幹細胞及分離之胎盤幹細胞群可與其他細胞(例如間質幹細胞，例如骨髓衍生之間質幹細胞)區分。可基於一或多種基因之表現來區分本文所述分離之胎盤幹細胞與(例如)骨髓衍生之間質幹細胞，該等基因之表現在分離之胎盤幹細胞中顯著高於骨髓衍生之間質幹細胞。具體而言，可基於一或多種基因之表現來區分可用於本文所提供治療方法中之分離之胎盤幹細胞與骨髓衍生之間質幹細胞，當細胞係在相同條件下生長時，該等基因之表現在分離之胎盤幹細胞中顯著(亦即，係至少兩倍)高於等量之骨髓衍生之間質幹細胞，其中該一或多種基因係ACTG2、ADARB1、AMIGO2、ARTS-1、B4GALT6、BCHE、C11orf9、CD200、COL4A1、COL4A2、CPA4、DMD、DSC3、DSG2、ELOVL2、F2RL1、FLJ10781、GATA6、GPR126、GPRC5B、ICAM1、IER3、IGFBP7、IL1A、IL6、IL18、KRT18、KRT8、LIPG、LRAP、MATN2、MEST、NFE2L3、NUAK1、PCDH7、PDLIM3、PKP2、RTN1、SERPINB9、ST3GAL6、ST6GALNAC5、SLC12A8、TCF21、TGFB2、VTN、ZC3H12A或前述任一者之組合。例如，參見美國專利申請公開案第2007/0275362號，其揭示內容係全文以引用方式併入本文中。在某些具體實施例中，該一或多種基因之該表現係藉由(例如)RT-PCR或微陣列分析使用(例如)U133-A微陣列(Affymetrix)來測定。 在另一具體實施例中，當在包含以下之培養基中培養達多次群倍增(例如，約3次至約35次群倍增中之任一點)時，該等分離之胎盤幹細胞表現該一或多種基因：DMEM-LG(例如，來自Gibco)；2%胎牛血清(例如，來自Hyclone Labs.)；1×胰島素-轉鐵蛋白-硒(ITS)；1×亞麻油酸-牛血清白蛋白(LA-BSA)；10-9 M地塞米松(例如，來自Sigma)；10-4 M抗壞血酸2-磷酸酯(例如，來自Sigma)；10 ng/mL表皮生長因子(例如，來自R&D Systems)；及10 ng/mL血小板衍生之生長因子(PDGF-BB)(例如，來自R&D Systems)。在另一具體實施例中，分離之胎盤細胞特異性基因係CD200。 該等基因之具體序列可以以下登錄號參見截至2008年3月之GenBank：NM_001615(ACTG2)、BC065545(ADARB1)、(NM_181847(AMIGO2)、AY358590(ARTS-1)、BC074884(B4GALT6)、BC008396(BCHE)、BC020196(C11orf9)、BC031103(CD200)、NM_001845(COL4A1)、NM_001846(COL4A2)、BC052289(CPA4)、BC094758(DMD)、AF293359(DSC3)、NM_001943(DSG2)、AF338241(ELOVL2)、AY336105(F2RL1)、NM_018215(FLJ10781)、AY416799(GATA6)、BC075798(GPR126)、NM_016235(GPRC5B)、AF340038(ICAM1)、BC000844(IER3)、BC066339(IGFBP7)、BC013142(IL1A)、BT019749(IL6)、BC007461(IL18)、(BC072017)KRT18、BC075839(KRT8)、BC060825(LIPG)、BC065240(LRAP)、BC010444(MATN2)、BC011908(MEST)、BC068455(NFE2L3)、NM_014840(NUAK1)、AB006755(PCDH7)、NM_014476(PDLIM3)、BC126199(PKP-2)、BC090862(RTN1)、BC002538(SERPINB9)、BC023312(ST3GAL6)、BC001201(ST6GALNAC5)、BC126160或BC065328(SLC12A8)、BC025697(TCF21)、BC096235(TGFB2)、BC005046(VTN)及BC005001(ZC3H12A)。 在某些具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞表現以下中之每一者：ACTG2、ADARB1、AMIGO2、ARTS-1、B4GALT6、BCHE、C11orf9、CD200、COL4A1、COL4A2、CPA4、DMD、DSC3、DSG2、ELOVL2、F2RL1、FLJ10781、GATA6、GPR126、GPRC5B、ICAM1、IER3、IGFBP7、IL1A、IL6、IL18、KRT18、KRT8、LIPG、LRAP、MATN2、MEST、NFE2L3、NUAK1、PCDH7、PDLIM3、PKP2、RTN1、SERPINB9、ST3GAL6、ST6GALNAC5、SLC12A8、TCF21、TGFB2、VTN及ZC3H12A，當細胞係在相同條件下生長時，其表現程度可檢測地高於等量之骨髓衍生之間質幹細胞。 在一具體實施例中，用於本文所述方法中之胎盤幹細胞表現ELOVL2基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之骨髓衍生之間質幹細胞(BM-MSC)中之表現。在另一具體實施例中，用於本文所述方法中之胎盤幹細胞表現ST3GAL6基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在另一具體實施例中，用於本文所述方法中之胎盤幹細胞表現ST6GALNAC5基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在另一具體實施例中，用於本文所述方法中之胎盤幹細胞表現SLC12A8基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞表現ARTS-1、IER3、IL6、KRT18、LRAP、MEST、NFE2L3或TGFB2基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞表現所有以下基因或表現其任一者之組合：ARTS-1、IER3、IL6、KRT18、LRAP、MEST、NFE2L3及TGFB2基因，其表現程度可檢測地高於該等基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞另外係CD10+、CD34-、CD105+及CD200+。在某些實施例中，至少70%之該等胎盤幹細胞並非源自母體。 在一具體實施例中，用於本文所述方法中之胎盤幹細胞表現所有以下基因或表現其任一者之組合：ELOVL2、ST3GAL6、ST6GALNAC5及SLC12A8基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞表現ARTS-1、IER3、IL6、KRT18、LRAP、MEST、NFE2L3或TGFB2基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞表現所有以下基因或表現其任一者之組合：ARTS-1、IER3、IL6、KRT18、LRAP、MEST、NFE2L3及TGFB2基因，其表現程度可檢測地高於該等基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞另外係CD10+、CD34-、CD105+及CD200+。在某些實施例中，至少70%之該等胎盤幹細胞並非源自母體。 在某些實施例中，本文所述方法中所用之胎盤幹細胞表現CPA4、TCF21或VTN基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在一具體實施例中，用於本文所述方法中之胎盤幹細胞表現所有以下基因或表現其任一者之組合：CPA4、TCF21及VTN基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞另外係CD10+、CD34-、CD105+及CD200+。在某些實施例中，至少70%之該等胎盤幹細胞並非源自母體。 在某些實施例中，本文所述方法中所用之胎盤幹細胞表現B4GALT6、FLJ10781或NUAK1基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在一具體實施例中，該等胎盤幹細胞進一步表現C11orf9基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞另外係CD10+、CD34-、CD105+及CD200+。在某些實施例中，至少70%之該等胎盤幹細胞並非源自母體。 在一具體實施例中，用於本文所述方法中之胎盤幹細胞表現所有以下基因或表現其任一者之組合：B4GALT6、FLJ10781及NUAK1基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在另一具體實施例中，該等胎盤幹細胞進一步表現C11orf9基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在一具體實施例中，用於本文所述方法中之胎盤幹細胞表現所有以下基因或表現其任一者之組合：B4GALT6、FLJ10781、NUAK1及C11orf9基因，其表現程度可檢測地高於該基因在等量之BM-MSC中之表現。在某些實施例中，該等胎盤幹細胞另外係CD10+、CD34-、CD105+及CD200+。在某些實施例中，至少70%之該等胎盤幹細胞並非源自母體。 在具體實施例中，胎盤幹細胞表現CD200及ARTS1(1型腫瘤壞死因子之胺肽酶調節劑)；ARTS-1及LRAP(白血球衍生之精胺酸胺肽酶)；IL6(介白素-6)及TGFB2(轉變生長因子，β2)；IL6及KRT18(角蛋白18)；IER3(立即早期反應3)、MEST(中胚層特異性轉錄同源物)及TGFB2；CD200及IER3；CD200及IL6；CD200及KRT18；CD200及LRAP；CD200及MEST；CD200及NFE2L3(類核因子(紅血球衍生之2)3)；或CD200及TGFB2，其表現程度可檢測地高於等量之骨髓衍生之間質幹細胞，其中該等骨髓衍生之間質幹細胞已在培養中經歷與該等分離之胎盤幹細胞所經歷傳代次數相等之次數之傳代。在其他具體實施例中，胎盤幹細胞表現ARTS-1、CD200、IL6及LRAP；ARTS-1、IL6、TGFB2、IER3、KRT18及MEST；CD200、IER3、IL6、KRT18、LRAP、MEST、NFE2L3及TGFB2；ARTS-1、CD200、IER3、IL6、KRT18、LRAP、MEST、NFE2L3及TGFB2；或IER3、MEST及TGFB2，其表現程度可檢測地高於等量之骨髓衍生之間質幹細胞，其中該等骨髓衍生之間質幹細胞已在培養中經歷與該等分離之胎盤幹細胞所經歷傳代次數相等之次數之傳代。 上文所提及基因之表現可藉由標準技術來評估。舉例而言，可藉由習用技術個別選擇並構築基於基因序列之探針。基因之表現可在例如包含針對一或多種基因之探針的微陣列(例如Affymetrix GENECHIP®人類基因組U133A 2.0陣列或Affymetrix GENECHIP®人類基因組U133 Plus 2.0(Santa Clara,California))上評估。即使特定GenBank登錄號之序列經修正，亦可評估該等基因之表現，此乃因使用熟知標準技術可容易地生成經修正序列之特異性探針。 可使用該等基因之表現程度來確認分離之胎盤幹細胞群之身份，從而確定細胞群包含至少複數個分離之胎盤幹細胞或諸如此類。身份經確認之分離之胎盤幹細胞群可係純系(例如自單一分離之胎盤幹細胞擴增之分離之胎盤幹細胞群)，或混合胎盤幹細胞群(例如包含自多個分離之胎盤幹細胞擴增之分離之胎盤幹細胞的細胞群)，或包含如本文所述之分離之胎盤幹細胞及至少一種其他類型之細胞的細胞群。 可使用該等基因之表現程度來選擇分離之胎盤幹細胞群。舉例而言，若上文所列一或多種基因在細胞群(例如選殖擴增之胎盤幹細胞)之樣品中之表現顯著高於骨髓衍生之間質幹細胞之等效群，則可選擇該細胞群。該選擇可係來自複數個分離之胎盤幹細胞群、來自複數個身份未知之細胞群等之細胞群。 可基於與一或多種該等基因在(例如)骨髓衍生之間質幹細胞對照中之表現程度相比該一或多種基因之表現程度來選擇分離之胎盤幹細胞。在一實施例中，使用該一或多種基因在包含等量之骨髓衍生之間質幹細胞之樣品中的表現程度作為對照。在另一實施例中，用於在某些條件下測試之分離之胎盤幹細胞之對照係代表該一或多種基因在該等條件下之骨髓衍生之間質幹細胞中之表現程度的數值。 本文所述分離之胎盤幹細胞在初代培養中或在包含諸如以下等物質之培養基中的增殖期間顯示上述特徵(例如，細胞表面標記物及/或基因表現譜之組合)：DMEM-LG(Gibco)、2%胎牛血清(FCS)(Hyclone Laboratories)、1×胰島素-轉鐵蛋白-硒(ITS)、1×亞麻油酸-牛血清白蛋白(LA-BSA)、10-9 M地塞米松(Sigma)、10-4 M抗壞血酸2-磷酸酯(Sigma)、10 ng/ml表皮生長因子(EGF)(R&D Systems)、10 ng/ml血小板衍生之生長因子(PDGF-BB)(R&D Systems)及100U青黴素(penicillin)/1000U鏈黴素(streptomycin)。 在本文所揭示任一胎盤幹細胞之某些實施例中，細胞係人類細胞。在本文所揭示任一胎盤細胞之某些實施例中，細胞標記物特徵或基因表現特徵係人類標記物或人類基因。 在分離之胎盤幹細胞或包含分離之胎盤幹細胞之細胞群之另一具體實施例中，該等細胞或該群已經擴增，例如已傳代至少、約或不超過1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19或20次，或已增殖至少、約或不超過1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38或40次群倍增。在該等分離之胎盤幹細胞或包含分離之胎盤幹細胞之細胞群之另一具體實施例中，該等細胞或該群係初始分離物。在本文所揭示之分離之胎盤幹細胞或包含分離之胎盤幹細胞之細胞群之另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞源自胎兒(亦即，具有胎兒基因型)。 在某些實施例中，該等分離之胎盤幹細胞在生長培養基(即經調配以促進增殖之培養基)中培養期間(例如在生長培養基中增殖期間)不分化。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞之增殖不需要飼養層。在另一具體實施例中，該等分離之胎盤幹細胞在不存在飼養層之培養物中不分化，此僅係由於缺少飼養細胞層所致。 在另一實施例中，分離之胎盤細胞對醛去氫酶(ALDH)呈陽性，如藉由醛去氫酶活性分析所評估。該等分析為業內已知(例如，參見Bostian及Betts，Biochem.J.,173,787,(1978))。在一具體實施例中，該ALDH分析使用ALDEFLUOR®(Aldagen公司，Ashland,Oregon)作為醛去氫酶活性之標記物。在一具體實施例中，介於約3%與約25%之間之胎盤幹細胞對ALDH呈陽性。在另一實施例中，該等分離之胎盤幹細胞顯示之ALDH活性係具有大致等量細胞且在相同條件下培養之骨髓衍生之間質幹細胞群之至少三倍或至少五倍。 在本文所述包含分離之胎盤幹細胞之任一細胞群之某些實施例中，該等細胞群中之胎盤幹細胞實質上不含具有母體基因型之細胞；例如該群中至少40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、98%或99%之胎盤幹細胞具有胎兒基因型。在本文所述包含分離之胎盤幹細胞之任一細胞群之某些其他實施例中，包含該等胎盤幹細胞之細胞群實質上不含具有母體基因型之細胞；例如該群中至少40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、98%或99%之細胞具有胎兒基因型。 在上文分離之胎盤幹細胞或包含分離之胎盤幹細胞之細胞群中任一者之一具體實施例中，細胞(例如所有細胞或該群中至少約95%或約99%之細胞)之核型係正常的。在上文胎盤幹細胞或胎盤幹細胞群中任一者之另一具體實施例中，胎盤幹細胞並非源自母體。 在本文所揭示胎盤細胞之任一實施例之一具體實施例中，胎盤細胞在遺傳上穩定，其顯示正常二倍體染色體計數及正常核型。 具有上文任一標記物組合之分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群可以任一比率組合。可組合上文任何兩種或更多種分離之胎盤幹細胞群以形成分離之胎盤幹細胞群。舉例而言，分離之胎盤幹細胞群可包含藉由上述一種標記物組合定義之第一分離之胎盤幹細胞群，及藉由上述另一種標記物組合定義之第二分離之胎盤幹細胞群，其中該第一群與第二群係以以下比率組合：約1：99、2：98、3：97、4：96、5：95、10：90、20：80、30：70、40：60、50：50、60：40、70：30、80：20、90：10、95：5、96：4、97：3、98：2或約99：1。可以類似方式組合上述任何三種、四種、五種或更多種分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群。 可用於本文所述方法及組合物中之分離之胎盤幹細胞可藉由(例如)使用或不使用酶促消化破碎胎盤組織(參見第5.3.3節)或灌注(參見第5.3.4節)來獲得。舉例而言，分離之胎盤幹細胞群可根據包含以下之方法來產生：灌注已排出臍帶血且經灌注以移除殘留血液之哺乳動物胎盤；用灌注溶液灌注該等胎盤；及收集該灌注溶液，其中該灌注溶液在灌注後包含具有分離之胎盤幹細胞之胎盤細胞群；及自該細胞群分離該等胎盤幹細胞。在一具體實施例中，使灌注溶液通過臍靜脈及臍動脈二者並在其流出胎盤後加以收集。在另一具體實施例中，使灌注溶液通過臍靜脈且自臍動脈收集，或使其通過臍動脈且自臍靜脈收集。 在不同實施例中，含於自胎盤灌注獲得之細胞群內之分離之胎盤幹細胞佔該胎盤幹細胞群之至少50%、60%、70%、80%、90%、95%、99%或至少99.5%。在另一具體實施例中，藉由灌注收集之分離之胎盤幹細胞包含胎兒及母體細胞。在另一具體實施例中，藉由灌注收集之分離之胎盤幹細胞中至少50%、60%、70%、80%、90%、95%、99%或至少99.5%係胎兒細胞。 在另一具體實施例中，本文提供包含如本文所述藉由灌注收集(分離)之分離之胎盤幹細胞群之組合物，其中該組合物包含用於分離胎盤幹細胞之灌注溶液之至少一部分。 本文所述分離之胎盤幹細胞群可藉由以下方式來產生：用組織破碎性酶消化胎盤組織以獲得包含胎盤幹細胞之胎盤細胞群，且分離或實質上分離複數個胎盤幹細胞與該等胎盤細胞之其餘部分。可消化完整胎盤或其任一部分以獲得本文所述之分離之胎盤幹細胞。在具體實施例中，例如，該等胎盤組織可係完整胎盤(例如，包括臍帶)、羊膜、絨毛膜、羊膜與絨毛膜之組合或前述任一者之組合。在其他具體實施例中，組織破碎性酶係胰蛋白酶或膠原酶。在不同實施例中，含於自消化胎盤獲得之細胞群內之分離之胎盤幹細胞佔該胎盤細胞群之至少50%、60%、70%、80%、90%、95%、99%或至少99.5%。 上述分離之胎盤幹細胞群及分離之胎盤幹細胞群一般可包含約、至少或不超過1×105、5×105、1×106、5×106、1×107、5×107、1×108、5×108、1×109、5×109、1×1010、5×1010、1×1011或更多之分離之胎盤幹細胞。可用於本文所述治療方法中之分離之胎盤幹細胞群包含至少50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、98%或99%存活的分離之胎盤幹細胞，例如如藉由(例如)台盼藍(trypan blue)拒染來測定。 對於上文胎盤幹細胞或胎盤幹細胞群中之任一者，細胞或胎盤幹細胞群係或可包含已傳代至少1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、12、14、16、18或20次或更多次或已擴增1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38或40次或更多次群倍增之細胞。 在上文胎盤幹細胞或胎盤幹細胞群中任一者之一具體實施例中，細胞或該群中至少約95%或約99%之細胞之核型係正常的。在上文胎盤幹細胞或胎盤幹細胞群中任一者之另一具體實施例中，細胞或細胞群中之細胞並非源自母體。 具有上文任一標記物組合之分離之胎盤幹細胞或分離之胎盤幹細胞群可以任一比率組合。可分離或富集上文任何兩種或更多種胎盤幹細胞群以形成胎盤幹細胞群。舉例而言，可將包含藉由上述一種標記物組合定義之第一胎盤幹細胞群之分離之胎盤幹細胞群與藉由上述另一種標記物組合定義之第二胎盤幹細胞群組合，其中該第一群與第二群係以以下比率組合：約1：99、2：98、3：97、4：96、5：95、10：90、20：80、30：70、40：60、50：50、60：40、70：30、80：20、90：10、95：5、96：4、97：3、98：2或約99：1。可以類似方式組合上述任何三種、四種、五種或更多種胎盤幹細胞或胎盤幹細胞群。 在上文所提及胎盤幹細胞之一具體實施例中，胎盤幹細胞組成型分泌IL-6、IL-8及單核球化學吸引蛋白(MCP-1)。 上述胎盤細胞群可包含約、至少或不超過1×105、5×105、1×106、5×106、1×107、2×107、2.5×107、3×107、3.5×107、4×107、4.5×107、5×107、5.5×107、6×107、6.5×107、7×107、7.5×107、8×107、8.5×107、9×107、9.5×107、1×108、5×108、1×109、5×109、1×1010、5×1010、1×1011或更多胎盤幹細胞。在某些實施例中，上述胎盤細胞群可包含約1×105至約1×106、約1×105至約1×107、約1×106至約1×107、約1×106至約1×108、約1×107至約1×108、約1×107至約1×109、約1×108至約1×1010、約1×109至約1×1010或約1×1010至約1×1011胎盤幹細胞。 在某些實施例中，可用於本文所提供方法中之胎盤幹細胞在於1至100 ng/mL VEGF中暴露4至21天後不表現CD34，如藉由免疫定位所檢測。在一具體實施例中，該等胎盤幹細胞黏附至組織培養塑膠。在另一具體實施例中，當(例如)在血管生成因子(例如血管內皮生長因子(VEGF)、表皮生長因子(EGF)、血小板衍生之生長因子(PDGF)或鹼性纖維母細胞生長因子(bFGF))存在下在(例如)諸如MATRIGELTM等基質上培養時，該等胎盤幹細胞誘導內皮細胞形成芽或管狀結構。 在另一態樣中，本文所提供胎盤幹細胞或細胞群(例如胎盤幹細胞群或細胞群(其中該細胞群中至少約50%、60%、70%、80%、90%、95%或98%之細胞係胎盤幹細胞)將以下中之一或多者或全部分泌至(例如)生長該或該等細胞之培養基中：VEGF、HGF、IL-8、MCP-3、FGF2、濾泡抑素、G-CSF、EGF、ENA-78、GRO、IL-6、MCP-1、PDGF-BB、TIMP-2、uPAR或半乳糖凝集素-1。在另一實施例中，與含氧量正常之條件(例如，約20%或約21% O2)相比，胎盤幹細胞在缺氧條件下(例如，低於約5% O2)表現升高程度之CD202b、IL-8及/或VEGF。 在另一實施例中，本文所述胎盤幹細胞或包含胎盤幹細胞之細胞群中之任一者可在與該等胎盤幹細胞接觸之內皮細胞群中引起形成芽或管狀結構。在一具體實施例中，共培養胎盤幹細胞與人類內皮細胞，例如當在細胞外基質蛋白(例如I型及IV型膠原)及/或血管生成因子(例如血管內皮生長因子(VEGF)、表皮生長因子(EGF)、血小板衍生之生長因子(PDGF)或鹼性纖維母細胞生長因子(bFGF))存在下在(例如)基質(例如胎盤膠原或MATRIGELTM)中或基質上培養至少4天時，該等人類內皮細胞形成芽或管狀結構或支持形成內皮細胞芽。在另一實施例中，當在細胞外基質蛋白(I型及IV型膠原)存在下在(例如)基質(例如胎盤膠原或MATRIGELTM)中或在基質上培養時，本文所述包含胎盤幹細胞之細胞群中之任一者分泌血管生成因子(例如血管內皮生長因子(VEGF)、肝細胞生長因子(HGF)、血小板衍生之生長因子(PDGF)、鹼性纖維母細胞生長因子(bFGF)或介白素-8(IL-8))，且由此可誘導人類內皮細胞形成芽或管狀結構。 在另一實施例中，上文包含胎盤幹細胞之細胞群中之任一者分泌血管生成因子。在具體實施例中，細胞群分泌血管內皮生長因子(VEGF)、肝細胞生長因子(HGF)、血小板衍生之生長因子(PDGF)、鹼性纖維母細胞生長因子(bFGF)及/或介白素-8(IL-8)。在其他具體實施例中，在活體外傷口癒合分析中，包含胎盤幹細胞之細胞群分泌一或多種血管生成因子，且由此誘導人類內皮細胞遷移。在其他具體實施例中，包含胎盤幹細胞之細胞群誘導人類內皮細胞、內皮前驅細胞、肌細胞或肌母細胞之成熟、分化或增殖。 5.4.3 選擇並產生胎盤細胞群 在某些實施例中，可選擇胎盤幹細胞群，其中該群具有免疫抑制性。在一實施例中，例如，免疫抑制性胎盤幹細胞可選自複數個胎盤細胞，其包含選擇胎盤細胞群，其中至少10%、至少20%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%或至少95%之該等細胞係CD10+、CD34-、CD105+胎盤幹細胞、CD10+、CD34-、CD200+胎盤幹細胞或CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞，且其中該等胎盤幹細胞在混合淋巴球反應(MLR)分析中可檢測地抑制T細胞增殖。在一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD45-及CD90+之胎盤幹細胞。 在另一實施例中，本文提供自複數個胎盤細胞選擇複數個免疫抑制性胎盤幹細胞之方法，其包含選擇胎盤幹細胞群，其中至少10%、至少20%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%或至少95%之該等細胞係CD200+、HLA-G-胎盤幹細胞，且其中該等胎盤幹細胞在混合淋巴球反應(MLR)分析中可檢測地抑制T細胞增殖。在一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD73+及CD105+之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-或CD45-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-、CD45-、CD73+及CD105+之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇亦包含選擇複數個胎盤細胞(例如上述胎盤幹細胞)，其當在允許形成類胚胎體之條件下培養時形成一或多個類胚胎體。 在另一實施例中，本文提供自複數個胎盤細胞選擇複數個免疫抑制性胎盤幹細胞之方法，其包含選擇複數個胎盤細胞，其中至少10%、至少20%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%或至少95%之該等細胞係CD73+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞，且其中該等胎盤細胞在混合淋巴球反應(MLR)分析中可檢測地抑制T細胞增殖。在一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係HLA-G-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-或CD45-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-及CD45-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-、CD45-及HLA-G-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇另外包含選擇胎盤幹細胞群，其當在允許形成類胚胎體之條件下培養該群時產生一或多個類胚胎體。 在另一實施例中，本文亦提供自複數個胎盤細胞選擇複數個免疫抑制性胎盤幹細胞之方法，其包含選擇複數個胎盤細胞，其中至少10%、至少20%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%或至少95%之該等細胞係CD200+、OCT-4+胎盤幹細胞，且其中該等胎盤細胞在混合淋巴球反應(MLR)分析中可檢測地抑制T細胞增殖。在一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD73+及CD105+之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係HLA-G-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-及CD45-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-、CD45-、CD73+、CD105+及HLA-G-之胎盤幹細胞。 在另一實施例中，本文提供自複數個胎盤細胞選擇複數個免疫抑制性胎盤幹細胞之方法，其包含選擇複數個胎盤細胞，其中至少10%、至少20%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%或至少95%之該等細胞係CD73+、CD105+及HLA-G-胎盤幹細胞，且其中該等胎盤細胞在混合淋巴球反應(MLR)分析中可檢測地抑制T細胞增殖。在一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-或CD45-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-及CD45-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD200+之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-、CD45-、OCT-4+及CD200+之胎盤幹細胞。 在另一實施例中，本文亦提供自複數個胎盤細胞選擇複數個免疫抑制性胎盤幹細胞之方法，其包含選擇複數個胎盤細胞，其中至少10%、至少20%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%或至少95%之該等細胞係CD73+、CD105+胎盤幹細胞，且其中該複數個在允許形成類胚胎體之條件下形成一或多個類胚胎體。在一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-或CD45-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-及CD45-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係OCT-4+之胎盤幹細胞。在一更具體實施例中，該選擇包含選擇亦係OCT-4+、CD34-、CD38-及CD45-之胎盤幹細胞。 在另一實施例中，本文提供自複數個胎盤細胞選擇複數個免疫抑制性胎盤幹細胞之方法，其包含選擇複數個胎盤幹細胞，其中至少10%、至少20%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%或至少95%之該等分離之胎盤細胞係OCT4+胎盤幹細胞，且其中該複數個在允許形成類胚胎體之條件下形成一或多個類胚胎體。在一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD73+及CD105+之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD34-、CD38-或CD45-之胎盤幹細胞。在另一具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD200+之胎盤幹細胞。在一更具體實施例中，該選擇包含選擇亦係CD73+、CD105+、CD200+、CD34-、CD38-及CD45-之胎盤幹細胞。 可根據本文所提供方法來產生免疫抑制性胎盤細胞群或複數個免疫抑制性胎盤細胞。舉例而言，本文提供產生細胞群之方法，其包含選擇上述複數個胎盤幹細胞中之任一者，及分離該複數個胎盤細胞與其他細胞(例如其他胎盤細胞)。在一具體實施例中，本文提供產生細胞群之方法，其包含選擇胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞(a)黏附至基質，(b)表現CD200且不表現HLA-G；或表現CD73、CD105及CD200；或表現CD200及OCT-4；或表現CD73、CD105，且不表現HLA-G；或表現CD73及CD105，且當在允許形成類胚胎體之條件下培養該群時，促進在包含該等胎盤幹細胞之胎盤細胞群中形成一或多個類胚胎體；或表現OCT-4，且當在允許形成類胚胎體之條件下培養該群時，促進在包含該等胎盤幹細胞之胎盤細胞群中形成一或多個類胚胎體；且(c)在MLR(混合淋巴球反應)或回歸分析中可檢測地抑制CD4+或CD8+ T細胞增殖；及選擇該等胎盤幹細胞，或分離該等胎盤幹細胞與其他細胞以形成細胞群。 在一更具體實施例中，免疫抑制性胎盤幹細胞群可藉由包含以下之方法來產生：選擇如下胎盤幹細胞：(a)黏附至基質，(b)表現CD200且不表現HLA-G，且(c)在MLR(混合淋巴球反應)中可檢測地抑制CD4+或CD8+ T細胞增殖；及分離該等胎盤幹細胞與其他細胞以形成細胞群。在另一具體實施例中，該方法包含選擇如下胎盤幹細胞：(a)黏附至基質，(b)表現CD73、CD105及CD200，且(c)在MLR中可檢測地抑制CD4+或CD8+ T細胞增殖；及分離該等胎盤幹細胞與其他細胞以形成細胞群。在另一具體實施例中，本文提供產生細胞群之方法，其包含選擇如下胎盤幹細胞：(a)黏附至基質，(b)表現CD200及OCT-4，且(c)在MLR中可檢測地抑制CD4+或CD8+ T細胞增殖；及分離該等胎盤幹細胞與其他細胞以形成細胞群。在另一具體實施例中，本文提供產生細胞群之方法，其包含選擇如下胎盤幹細胞：(a)黏附至基質，(b)表現CD73及CD105，(c)當在允許形成類胚胎體之條件下培養時，形成類胚胎體，且(d)在MLR中可檢測地抑制CD4+或CD8+ T細胞增殖；及分離該等胎盤幹細胞與其他細胞以形成細胞群。在另一具體實施例中，該方法包含選擇如下胎盤幹細胞：(a)黏附至基質，(b)表現CD73及CD105，且不表現HLA-G，且(c)在MLR中可檢測地抑制CD4+或CD8+ T細胞增殖；及分離該等胎盤幹細胞與其他細胞以形成細胞群。在另一具體實施例中，該方法包含選擇如下胎盤幹細胞：(a)黏附至基質，(b)表現OCT-4，(c)當在允許形成類胚胎體之條件下培養時，形成類胚胎體，且(d)在MLR中可檢測地抑制CD4+或CD8+ T細胞增殖；及分離該等胎盤細胞與其他細胞以形成細胞群。 在產生免疫抑制性胎盤幹細胞群之方法之一具體實施例中，該等T細胞及該等胎盤幹細胞係以約5：1之比率存於該MLR中。用於該方法中之胎盤幹細胞可衍生自完整胎盤，或主要衍生自羊膜，或羊膜及絨毛膜。在另一具體實施例中，與在不存在該等胎盤幹細胞之情形下T細胞增殖在該MLR中之量相比，在該MLR中，胎盤幹細胞將CD4+或CD8+ T細胞增殖抑制至少50%、至少75%、至少90%或至少95%。該方法可另外包含選擇及/或產生能免疫調節(例如抑制)其他免疫細胞之活性(例如自然殺手(NK)細胞之活性)之胎盤幹細胞群。 5.4.4 疼痛模型 在某些實施例中，本文所述胎盤幹細胞之特徵在於其能在(例如)動物疼痛模型中降低或改善疼痛。舉例而言，倘若產生一批或一批次胎盤幹細胞，則可使用一或多種疼痛動物模型來測試該批或該批次之樣品。然後可選擇已獲得在疼痛分析中可接受地降低疼痛之樣品之胎盤幹細胞進一步用於(例如)改善任一類型之疼痛或改善特定類型之疼痛。應理解，所測試胎盤幹細胞僅需要在一種分析中進行測試及/或顯示效能即可視為治療上有效；不需要在多個或所有疼痛動物模型中進行測試。在某些實施例中，可在與一或多種相關類型之疼痛、或與治療特定患者群相關之疼痛相關之疼痛分析中測試胎盤幹細胞樣品。 在某些實施例中，可在(例如)內臟痛之乙酸誘導模型中測試胎盤幹細胞。此一研究可藉由(例如)以下方式來實施：以約10 mL/kg之劑量體積向小鼠腹膜內投與乙酸，且在投與乙酸之前投與媒劑或胎盤幹細胞(例如，1×106至1×108)。在排除最初5分鐘後，於隨後20分鐘內記錄扭動次數。每一實驗含有以下群：媒劑+2-5次劑量之胎盤幹細胞+陽性對照；n=10/組。 在某些其他實施例中，使用Chung脊神經結紮模型來測試胎盤幹細胞之樣品，其中牢固結紮L5及L6脊神經，從而產生穩定且長時間持續之神經病性疼痛。 在某些其他實施例中，可使用周圍神經病變之紫杉醇分析來測試胎盤幹細胞之樣品，其中在投與一系列紫杉醇注射劑後隨時間出現疼痛。 在某些其他實施例中，可使用神經病性疼痛(異常性疼痛)之Bennet模型來測試胎盤幹細胞之樣品，其中因圍繞一條坐骨神經施加鬆散結紮而引起之疼痛表現為受影響後爪受到輕微機械刺激後急速縮回。 在某些其他實施例中，可使用投與卡拉膠(carrageenan)誘導之疼痛模型來測試胎盤幹細胞之樣品。 在某些其他實施例中，可使用神經病性疼痛(例如，異常性疼痛)之完全弗氏佐劑(Complete Freund's Adjuvant)模型來測試胎盤幹細胞之樣品。舉例而言，可使用每組五隻大鼠，其中初始劑量為(例如)靜脈內1×106至1×107，且藉由CFA誘導之後爪痛覺過敏之降低來測定效能。施用不成對司徒登氏t測試(Unpaired Student's t test)來比較媒劑對照與治療組。可使用其他疼痛藥劑作為陽性對照(mg/kg/os)，例如阿斯匹靈>100；環孢靈A(cyclosporine A)>100；地塞米松>30；加巴噴丁，約200；吲哚美辛(indomethacin)>10；或嗎啡30。 在某些其他實施例中，可使用苯醌(PQ)作為產生疼痛之化合物來測試胎盤幹細胞之樣品，每種條件使用(例如)五隻小鼠，初始劑量為(例如)靜脈內1×106至1×107，1 hr預治療，之後在5 min觀察階段期間測定PQ(2 mg/kg，腹膜內)誘導之扭動之減少。 在某些其他實施例中，可使用(例如)手術後疼痛之後爪切口模型來測試胎盤幹細胞之樣品。 在某些其他實施例中，可使用輕打尾模型來測試胎盤幹細胞之樣品，其中在投與胎盤幹細胞之前及之後評估對輕打尾疼痛刺激之反應。 本文所提供疼痛分析僅係非限制性實例；亦可使用業內已知之其他分析。 5.4.5 培養中之生長 對於任何哺乳動物細胞，胎盤細胞(例如本文所述胎盤幹細胞)之生長部分取決於所選用於生長之特定培養基。在最適條件下，胎盤幹細胞之數目通常在3-5天內倍增。在培養期間，本文所提供胎盤幹細胞在培養中黏附至基質(例如組織培養容器之表面，例如，組織培養皿塑膠、纖連蛋白塗佈之塑膠及諸如此類)且形成單層。 本文所提供包含胎盤幹細胞之分離之胎盤細胞群當在適宜條件下培養時可形成類胚胎體，亦即，在黏附性幹細胞層頂部生長之三維細胞簇。類胚胎體內之細胞表現與極早期幹細胞有關之標記物，例如OCT-4、Nanog、SSEA3及SSEA4。類胚胎體內之細胞通常不黏附至培養基質(本文所述胎盤幹細胞亦如此)，但在培養期間仍附著至黏附細胞。類胚胎體細胞之存活率取決於黏附性胎盤幹細胞，此乃因不存在黏附性幹細胞時不形成類胚胎體。因此，黏附性胎盤細胞在包含黏附性胎盤細胞之胎盤細胞群中促進一或多個類胚胎體生長。間質幹細胞(例如骨髓衍生之間質幹細胞)在培養中不產生類胚胎體。 5.4.6分化 在某些實施例中，本文所提供可用於治療個體之疼痛之方法中的胎盤細胞可分化為不同定向細胞譜系。舉例而言，在某些實施例中，胎盤細胞可分化為脂肪形成性、軟骨形成性、神經病性或骨原性譜系之細胞。該分化可藉由(例如)業內已知之用於使(例如)骨髓衍生之間質幹細胞分化為類似細胞譜系之任何方法或藉由本文其他地方闡述之方法來完成。使胎盤細胞分化為特定細胞譜系之具體方法揭示於(例如)美國專利第7,311,905號及美國專利申請公開案第2007/0275362號中，其揭示內容係全文以引用方式併入本文中。 本文所提供胎盤幹細胞可展現在活體外、在活體內或在活體外及活體內分化為特定細胞譜系之能力。在一具體實施例中，例如在NOD-SCID小鼠模型中，當置於引起或促進分化為特定細胞譜系之條件中時，本文所提供胎盤幹細胞可在活體外分化，但在活體內無可檢測的分化。 5.5 獲得胎盤幹細胞之方法5.5.1 幹細胞收集組合物 可根據本文所提供方法來收集並分離胎盤幹細胞。一般而言，胎盤幹細胞係使用生理上可接受之溶液(例如幹細胞收集組合物)自哺乳動物胎盤獲得。幹細胞收集組合物詳細闡述於標題為「Improved Composition for Collecting and Preserving Placental cells and Methods of Using the Composition」且於2005年12月29日申請之相關美國臨時申請案第60/754,969號中。 幹細胞收集組合物可包含適於收集及/或培養幹細胞之任何生理上可接受之溶液，例如鹽水溶液(例如，磷酸鹽緩衝鹽水、克氏溶液(Kreb's solution)、改良克氏溶液、伊氏溶液(Eagle's solution)、0.9% NaCl等)、培養基(例如，DMEM、HDMEM等)及諸如此類。 幹細胞收集組合物可包含一或多種有助於自收集時間至培養時間保存胎盤幹細胞(亦即，防止胎盤幹細胞死亡，或延遲胎盤幹細胞死亡，減少細胞群中死亡之胎盤幹細胞數目或諸如此類)之組份。該等組份可係(例如)細胞凋亡抑制劑(例如，半胱天冬酶抑制劑或JNK抑制劑)；血管舒張劑(例如，硫酸鎂、抗高血壓藥物、心房排鈉肽(ANP)、促腎上腺皮質素、皮質釋素、硝普鈉(sodium nitroprusside)、鹽酸肼屈嗪、腺苷三磷酸、腺苷、吲哚美辛或硫酸鎂、磷酸二酯酶抑制劑等)；壞死抑制劑(例如，2-(1H-吲哚-3-基)-3-戊基胺基-馬來醯亞胺、吡咯啶二硫代胺基甲酸鹽或氯硝西泮)；TNF-α抑制劑；及/或含氧全氟碳(例如，溴化全氟辛基、溴化全氟癸基等)。 幹細胞收集組合物可包含一或多種組織降解酶，例如金屬蛋白酶、絲胺酸蛋白酶、中性蛋白酶、RNase或DNase或諸如此類。該等酶包括(但不限於)膠原酶(例如，膠原酶I、II、III或IV、來自溶組織梭菌(Clostridium histolyticum)之膠原酶等)；分散酶、嗜熱菌蛋白酶、彈性蛋白酶、胰蛋白酶、釋放酶(LIBERASE)、透明質酸酶及諸如此類。 幹細胞收集組合物可包含殺菌或製菌有效量之抗生素。在某些非限制性實施例中，抗生素係大環內酯(macrolide，例如，妥布黴素(tobramycin))、頭孢菌素(cephalosporin，例如，頭孢氨苄(cephalexin)、頭孢華定(cephradine)、頭孢呋辛(cefuroxime)、頭孢丙烯(cefprozil)、頭孢克洛(cefaclor)、頭孢克肟(cefixime)或頭孢羥氨苄(cefadroxil))、克拉黴素(clarithromycin)、紅黴素(erythromycin)、青黴素(例如，青黴素V)或喹諾酮(quinolone，例如，氧氟沙星(ofloxacin)、環丙沙星或諾氟沙星(norfloxacin))、四環素(tetracycline)、鏈黴素等。在一特定實施例中，抗生素具有針對革蘭氏(Gram)(+)及/或革蘭氏(-)細菌(例如綠膿桿菌(Pseudomonas aeruginosa)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)及諸如此類)之活性。 幹細胞收集組合物亦可包含以下化合物中之一或多者：腺苷(約1 mM至約50 mM)；D-葡萄糖(約20 mM至約100 mM)；鎂離子(約1 mM至約50 mM)；分子量大於20,000道爾頓之大分子，在一實施例中，其以足以維持內皮完整性及細胞存活率之量存在(例如，合成或天然膠體、諸如葡聚糖等多糖或聚乙二醇，以約25 g/l至約100 g/l或約40 g/l至約60 g/l存在)；抗氧化劑(例如，丁基化羥基茴香醚、丁基化羥基甲苯、麩胱甘肽、維生素C或維生素E，以約25 μM至約100 μM存在)；還原劑(例如，N-乙醯基半胱胺酸，以約0.1 mM至約5 mM存在)；防止鈣進入細胞之試劑(例如，維拉帕米(verapamil)，以約2 μM至約25 μM存在)；硝酸甘油(例如，約0.05 g/L至約0.2 g/L)；抗凝劑，在一實施例中，其以足以幫助防止殘留血液凝固之量存在(例如，肝素(heparin)或水蛭素(hirudin)，以約1000單位/l至約100,000單位/l之濃度存在)；或含有阿米洛利(阿米洛利)之化合物(例如，阿米洛利、乙基異丙基阿米洛利、六亞甲基阿米洛利、二甲基阿米洛利或異丁基阿米洛利，以約1.0 μM至約5 μM存在)。 5.5.2 胎盤之收集及處理 一般而言，人類胎盤係在生產後在其娩出後不久回收。在一較佳實施例中，胎盤係在知情同意後及在獲得患者之完整醫療記錄並使其與胎盤相關聯後自患者回收。較佳地，醫療記錄在分娩後繼續。可使用此一醫療記錄來協調胎盤或自其收穫之幹細胞之後續使用。舉例而言，根據醫療記錄，人類胎盤細胞可用於胎盤相關嬰兒或該嬰兒之父母、同胞或其他親屬之個人化醫療。 在回收胎盤幹細胞之前，移除臍帶血及胎盤血。在某些實施例中，在分娩後回收胎盤中之臍帶血。可對胎盤實施習用臍帶血回收方法。通常，使用針或套管在重力之幫助下對胎盤進行放血(例如，參見Anderson，美國專利第5,372,581號；Hessel等人，美國專利第5,415,665號)。通常將針或套管置於臍靜脈中且可輕輕按摩胎盤以幫助將臍帶血自胎盤排出。該臍帶血回收可以商業方式實施，例如由LifeBank公司、Cedar Knolls、N.J.、ViaCord、Cord Blood Registry及Cryocell實施。較佳地，使胎盤藉由重力排空而不進行進一步操作，以使臍帶血回收期間之組織破碎降至最低。 通常，將胎盤自分娩室或產房轉運至另一位置(例如實驗室)，以供回收臍帶血及藉由(例如)灌注或組織解離來收集幹細胞。較佳在無菌絕熱轉運器件中轉運胎盤(將胎盤溫度維持在20-28℃之間)，例如將胎盤與夾緊之近端臍帶一起置於無菌夾鏈塑膠袋中，然後將其置於絕熱容器中。在另一實施例中，胎盤係在實質上如2005年9月19日申請之待決之美國專利申請案第11/230,760號中所述之臍帶血收集套組中轉運。較佳地，在分娩後4至24小時將胎盤運送至實驗室。在某些實施例中，在臍帶血回收之前，較佳在插入胎盤之4-5 cm(公分)內夾緊近端臍帶。在其他實施例中，在臍帶血回收後但在進一步處理胎盤之前夾緊近端臍帶。 在收集胎盤幹細胞之前，可將胎盤儲存在無菌條件下及室溫或5至25℃(攝氏度)溫度下。在灌注胎盤以移除任何殘留臍帶血之前，可將胎盤儲存長於48小時之時間，且較佳儲存4至24小時之時間。較佳將胎盤儲存在抗凝劑溶液中及5至25℃(攝氏度)溫度下。適宜抗凝劑溶液為業內所熟知。舉例而言，可使用肝素或華法林鈉(warfarin sodium)溶液。在一較佳實施例中，抗凝劑溶液包含肝素溶液(例如，1% w/w存於1：1000溶液中)。在收集胎盤細胞之前，已放血胎盤較佳儲存不超過36小時。 哺乳動物胎盤或其一部分在如上文以一般方式收集及製備後，即可以任一業內已知方式來處理，例如可經灌注或破碎(例如經一或多種組織破碎性酶消化)，從而獲得幹細胞。 5.5.3 胎盤組織之物理破碎及酶促消化 在一實施例中，胎盤幹細胞係藉由器官之物理破碎(例如酶促消化)使用(例如)上文第5.6.1節中所述之幹細胞收集組合物自哺乳動物胎盤收集。舉例而言，可對胎盤或其一部分進行(例如)壓碎、剪切、切碎、切塊、剁碎、浸軟或諸如此類，同時與(例如)緩衝液、培養基或幹細胞收集組合物接觸，且隨後用一或多種酶消化組織。亦可將胎盤或其一部分物理破碎並用一或多種酶消化，且然後將所得材料浸漬於或混合入緩衝液、培養基或幹細胞收集組合物中。可使用任何物理破碎方法，前提係該破碎方法使該器官中之複數個、更佳大部分、且更佳至少60%、70%、80%、90%、95%、98%或99%之細胞保持存活，如藉由(例如)台盼藍拒染所測定。 通常，胎盤細胞可藉由破碎一小塊胎盤組織(例如體積為約1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、20、30、40、50、60、70、80、90、100、200、300、400、500、600、700、800、900或約1000立方毫米之胎盤組織塊)來獲得。 酶促消化可使用單一酶或酶組合來實施。在一實施例中，胎盤組織之酶促消化使用基質金屬蛋白酶、中性蛋白酶及用於消化透明質酸之黏液溶解酶之組合，例如膠原酶、分散酶及透明質酸酶之組合或釋放酶(Boehringer Mannheim公司，Indianapolis,Ind.)及透明質酸酶之組合。可用於破碎胎盤組織之其他酶包括木瓜蛋白酶、去氧核糖核酸酶、絲胺酸蛋白酶(例如胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶或彈性蛋白酶)。絲胺酸蛋白酶可受血清中之α 2微球蛋白抑制，且因此用於消化之培養基中通常無血清。EDTA及DNase常在酶消化程序中用於提高細胞回收之效率。較佳稀釋消化物以避免將幹細胞阻塞於黏性消化物中。 組織消化酶之典型濃度包括(例如)50-200 U/mL(對於膠原酶I及膠原酶IV)、1-10 U/mL(對於分散酶)及10-100 U/mL(對於彈性蛋白酶)。多種蛋白酶可組合使用(亦即，同一消化反應中使用兩種或更多種蛋白酶)，或可依序使用以釋放胎盤細胞。舉例而言，在一實施例中，首先用適宜量之膠原酶I以2 mg/ml將胎盤或其部分消化30分鐘，之後用胰蛋白酶(0.25%)在37℃下消化10分鐘。絲胺酸蛋白酶較佳在使用其他酶之後連續使用。 在另一實施例中，可藉由將螯合劑(例如乙二醇雙(2-胺基乙基醚)-N,N,N'N'-四乙酸(EGTA)或乙二胺四乙酸(EDTA))添加至包含幹細胞之幹細胞收集組合物或添加至在用幹細胞收集組合物分離胎盤幹細胞之前已破碎及/或消化組織之溶液中來進一步破碎組織。 應瞭解，倘若消化完整胎盤或胎盤中包含胎兒及母體細胞二者之一部分(例如，其中胎盤之該部分包含絨毛膜或絨毛葉)以獲得胎盤幹細胞，則所收集胎盤細胞將包含衍生自胎兒及母體來源二者之胎盤細胞。倘若使用不包含或包含可忽略量之母體細胞之胎盤部分(例如，羊膜)來獲得胎盤幹細胞，則所收集胎盤幹細胞將幾乎僅包含胎兒胎盤幹細胞。 5.5.4 胎盤灌注 胎盤幹細胞亦可藉由灌注哺乳動物胎盤來獲得。灌注哺乳動物胎盤以獲得幹細胞之方法揭示於(例如)以下文獻中：Hariri，美國申請公開案第2002/0123141號及標題為「Improved Composition for Collecting and Preserving Placental Cells and Methods of Using the Composition」且於2005年12月29日申請之相關美國臨時申請案第60/754,969號。 胎盤幹細胞可經由(例如)胎盤脈管系統使用(例如)幹細胞收集組合物作為灌注溶液藉由灌注來收集。在一實施例中，哺乳動物胎盤係藉由使灌注溶液通過臍動脈及臍靜脈中之一者或二者來灌注。使灌注溶液流經胎盤可使用(例如)重力流動至胎盤中來完成。較佳地，使用幫浦(例如)蠕動幫浦迫使灌注溶液通過胎盤。臍靜脈可(例如)用套管(例如TEFLON®或塑膠套管)進行插套管，該套管連接至無菌連接裝置(例如無菌管道)。使無菌連接裝置連接至灌注歧管。 在灌注之準備中，較佳使胎盤以使臍動脈及臍靜脈位於胎盤最高點之方式定向(例如，懸浮)。胎盤可藉由使灌注流體(例如本文所提供幹細胞收集組合物)通過胎盤脈管系統或通過胎盤脈管系統及周圍組織來灌注。在一實施例中，將臍動脈及臍靜脈同時連接至經由撓性連接器連接至灌注溶液池之吸管。使灌注溶液通入臍靜脈及動脈中。灌注溶液自血管壁流出及/或通過血管壁進入胎盤周圍組織，且自懷孕期間附著至母體子宮之胎盤表面在適宜開口器皿中收集。亦可經由臍帶開口引入灌注溶液且使其自與母體子宮壁相接之胎盤壁中之開口流出或滲出。在另一實施例中，使灌注溶液通過臍靜脈且自臍動脈收集，或使其通過臍動脈且自臍靜脈收集。 在一實施例中，在灌注期間夾緊近端臍帶，且更佳地在臍帶插入胎盤中之4-5 cm(公分)內夾緊。 在放血過程期間灌注流體來自哺乳動物胎盤之第一次收集物一般因臍帶血及/或胎盤血中之殘留紅血球而著色；此部分灌注物可棄去。灌注流體隨著灌注進行而逐漸無色，且自胎盤洗去殘留臍帶血細胞。 用於收集胎盤幹細胞之灌注液體之體積可隨欲收集之胎盤幹細胞之數目、胎盤之大小、欲自單一胎盤製備之收集物之數目等而變。在不同實施例中，灌注液體之體積可為50 mL至5000 mL、50 mL至4000 mL、50 mL至3000 mL、100 mL至2000 mL、250 mL至2000 mL、500 mL至2000 mL或750 mL至2000 mL。通常，在放血後用700-800 mL灌注液體灌注胎盤。 胎盤可經數小時或數天灌注複數次。倘若欲複數次灌注胎盤，則可將其在容器或其他適宜器皿中之無菌條件下維持或培養，且用幹細胞收集組合物或標準灌注溶液(例如，生理鹽水溶液，例如磷酸鹽緩衝鹽水(「PBS」))來灌注，其含或不含抗凝劑(例如，肝素、華法林鈉、香豆素(coumarin)、雙羥香豆素)及/或含或不含抗微生物劑(例如，β-巰基乙醇(0.1 mM))；抗生素，例如鏈黴素(例如，40-100 μg/ml)、青黴素(例如，40 U/ml)、雙性黴素B(amphotericin B，例如，0.5 μg/ml)。在一實施例中，將分離之胎盤維持或培養一段時間且不收集灌注液，從而在灌注及收集灌注液之前將胎盤維持或培養1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23或24小時，或2或3天或更多天。可將經灌注胎盤維持一或多個額外時間，例如1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24小時或更久，且用(例如)700-800 mL灌注流體進行第二次灌注。可將胎盤灌注1、2、3、4、5次或更多次，例如每1、2、3、4、5或6小時一次。在一較佳實施例中，重複灌注胎盤及收集灌注溶液(例如幹細胞收集組合物)直至所回收之有核細胞之數目降至低於100細胞/ml。可在不同時間點進一步個別處理灌注液以回收時間依賴性胎盤幹細胞群。亦可儲集不同時間點之灌注液。 不期望受任何理論限制，在放血及足夠時間之胎盤灌注後，相信胎盤幹細胞遷移至胎盤之放血及灌注微循環中，其中該等細胞較佳可藉由灌注洗入收集器皿中來收集。灌注分離之胎盤不僅用於移除殘留之臍帶血，且亦向胎盤提供包括氧在內之適宜營養素。可培養胎盤且用用於移除殘留臍帶血細胞之類似溶液(較佳地不添加抗凝劑)來灌注。 可藉由用包含一或多種蛋白酶或其他組織破壞性酶之溶液灌注自胎盤分離幹細胞。在一具體實施例中，使胎盤或其部分達到25-37℃，且將其與一或多種組織破碎性酶在200 mL培養基中一起培育30分鐘。自灌注液收集細胞，使其達到4℃，且用包含5 mM EDTA、2 mM二硫蘇糖醇及2 mM β-巰基乙醇之冷抑制劑混合物洗滌。在數分鐘後用本文其他地方所述之冷(例如，4℃)幹細胞收集組合物洗滌胎盤幹細胞。 使用盤式方法灌注(亦即，其中在灌注液自胎盤之母體側流出後收集灌注液)產生胎兒及母體細胞之混合物。因此，藉由此方法收集之細胞包含胎兒及母體兩種來源之混合胎盤幹細胞群。相反，僅經由胎盤脈管系統灌注(其中使灌注流體通過一個或兩個胎盤脈管且僅經由其餘脈管收集)使收集之胎盤幹細胞群幾乎僅源自胎兒。 5.5.5 胎盤細胞之分離、分選及表徵 藉由灌注或酶促消化獲得之來自哺乳動物胎盤之幹細胞皆可首先藉由Ficoll梯度離心自其他細胞純化(即，分離)。該離心之離心速率等可遵循任何標準方案。在一實施例中，例如，藉由在室溫下以5000×g離心15分鐘自灌注液回收自胎盤收集之細胞，該離心將細胞與(例如)污染性碎屑及血小板分離。在另一實施例中，將胎盤灌注液濃縮至約200 ml，經Ficoll溫和分層，且在22℃下以約1100×g離心20分鐘，且收集細胞之低密度界面層以供進一步處理。 可使細胞沈澱再懸浮於新鮮幹細胞收集組合物或適於維持幹細胞之培養基(例如含有2 U/ml肝素及2 mM EDTA之IMDM無血清培養基(GibcoBRL,NY))中。可根據製造商之推薦程序使用(例如)Lymphoprep(Nycomed Pharma,Oslo,Norway)來分離總單核細胞部分。 本文所用「分離」胎盤幹細胞意指移除至少20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%、95%或99%之通常在完整哺乳動物胎盤中與胎盤幹細胞相連之細胞。 藉由灌注或消化獲得之胎盤幹細胞可(例如)進一步或首先使用(例如)含有0.2% EDTA之0.05%胰蛋白酶溶液(Sigma,St.Louis MO)藉由差別胰蛋白酶消化來分離。差別胰蛋白酶消化係可能的，此乃因胎盤幹細胞通常在約5分鐘內自塑膠表面脫離，而其他黏附性群通常需要培育超過20-30分鐘。可在胰蛋白酶消化及使用(例如)胰蛋白酶中和溶液(TNS,Cambrex)進行胰蛋白酶中和後收穫脫離之胎盤幹細胞。 在分離胎盤幹細胞之一實施例中，將(例如)約5-10×106胎盤細胞之等分試樣置於若干個T-75燒瓶(纖連蛋白塗佈之T75燒瓶較佳)中之每一者中。在此一實施例中，可用市售間質幹細胞生長培養基(MSCGM)(Cambrex)培養細胞，且將其置於組織培養培育器(37℃，5% CO2)中。在10至15天後，藉由用PBS洗滌自燒瓶移除非黏附細胞。然後藉由MSCGM替代PBS。較佳每天檢查燒瓶中各種黏附細胞類型之存在，且具體而言用於鑑別及擴增纖維母細胞樣細胞簇。 自哺乳動物胎盤收集之細胞之數目及類型可藉由(例如)以下方式來監測：使用標準細胞檢測技術(例如流式細胞術、細胞分選、免疫細胞化學(例如，用組織特異性或細胞標記物特異性抗體染色)、螢光活化之細胞分選(FACS)、磁性活化之細胞分選(MACS))量測形態及細胞表面標記物之變化；使用光學或共軛焦顯微術檢查細胞形態；及/或使用業內熟知之技術(例如PCR及基因表現剖析)量測基因表現之變化。該等技術亦可用於鑑別對一或多種特定標記物呈陽性之細胞。舉例而言，使用針對CD34之抗體使用上述技術可確定，與(例如)同種型對照相比，細胞是否包含可檢測量之CD34；若如此，則細胞為CD34+。同樣，若細胞產生藉由RT-PCR可檢測之足量OCT-4 RNA，或產生之OCT-4 RNA顯著多於終末分化細胞，則細胞為OCT-4+。針對細胞表面標記物(例如，CD標記物，例如CD34)及幹細胞特異性基因(例如OCT-4)之序列之抗體為業內所熟知。 胎盤細胞、具體而言已藉由Ficoll分離、差別黏附或二者之組合分離之細胞可使用螢光活化之細胞分選器(FACS)來分選(例如進一步分離)。螢光活化之細胞分選(FACS)係基於顆粒之螢光特性分離顆粒(包括細胞)之熟知方法(Kamarch,1987,Methods Enzymol,151：150-165)。個別顆粒中螢光部分之雷射激發產生少量電荷，從而允許自混合物電磁分離正顆粒及負顆粒。在一實施例中，用不同螢光標記對細胞表面標記物特異性抗體或配體進行標記。經由細胞分選器處理細胞，從而允許基於細胞與所用抗體結合之能力來分離細胞。可將FACS分選之顆粒直接沈積至96孔或384孔板之個別孔中以促進分離及選殖。 在一分選方案中，胎盤幹細胞可基於標記物CD34、CD38、CD44、CD45、CD73、CD105、OCT-4及/或HLA-G或本文其他地方所列示其他標記物中之任一者之表現來分選。此可結合基於幹細胞在培養中之黏附特性選擇幹細胞之程序來完成。舉例而言，胎盤幹細胞之黏附選擇可在基於標記物之表現進行分選之前或之後完成。在一實施例中，例如，胎盤幹細胞可首先基於其CD34表現來分選；保留CD34-細胞，且將CD200+或HLA-G+細胞與所有其他CD34-細胞相分離。在另一實施例中，胎盤幹細胞可基於其CD200及/或HLA-G表現或其缺乏來分選；例如，可分離顯示該等標記物中任一者之細胞以供進一步使用。在一具體實施例中，表現(例如)CD200及/或HLA-G之細胞可基於其CD73及/或CD105表現、或由抗體SH2、SH3或SH4識別之表位、或CD34、CD38或CD45表現之缺乏來分選。舉例而言，在一實施例中，胎盤幹細胞係藉由CD200、HLA-G、CD73、CD105、CD34、CD38及CD45之表現或其缺乏來分選，且分離CD200+、HLA-G-、CD73+、CD105+、CD34-、CD38-及CD45-胎盤幹細胞與其他胎盤細胞以供進一步使用。 在另一實施例中，可使用磁珠來分離細胞，例如分離胎盤幹細胞與其他胎盤細胞。可使用磁性活化之細胞分選(MACS)技術來分選細胞，該技術係基於顆粒結合磁珠(0.5-100 μm直徑)之能力來分離顆粒之方法。可對磁性微球實施多種可用修飾，包括共價添加特異性識別特定細胞表面分子或半抗原之抗體。然後可將珠粒與細胞混合以使得可結合。然後使細胞通過磁場以分離出具有特異性細胞表面標記物之細胞。在一實施例中，然後可分離該等細胞並將其與偶合至針對另一細胞表面標記物之抗體之磁珠再混合。再次使細胞通過磁場，從而分離結合兩種抗體之細胞。然後可將該等細胞稀釋至單獨盤(例如微量滴定盤)中以供純系分離。 亦可基於細胞形態及生長特徵來對胎盤幹細胞進行表徵及/或分選。舉例而言，胎盤幹細胞之特徵可描述為(例如)在培養中具有纖維母細胞樣外觀及/或基於該外觀而經選擇。胎盤幹細胞之特徵亦可描述為具有形成類胚胎體之能力及/或基於該能力而經選擇。在一實施例中，例如，可分離具有纖維母細胞樣形狀，表現CD73及CD105，且在培養中產生一或多個類胚胎體之胎盤細胞與其他胎盤細胞。在另一實施例中，分離在培養中產生一或多個類胚胎體之OCT-4+胎盤細胞與其他胎盤細胞。 在另一實施例中，可藉由群落形成單位分析來鑑別並表徵胎盤幹細胞。群落形成單位分析一般為業內已知，例如MESENCULTTM培養基(Stem Cell Technologies公司，Vancouver British Columbia)。 可使用諸如以下等業內已知之標準技術來分析胎盤幹細胞之存活率、增殖潛能及壽命：台盼藍拒染分析、二乙酸螢光素酯吸收分析、碘化丙啶吸收分析(評估存活率)；及胸苷吸收分析、MTT細胞增殖分析(評估增殖)。壽命可藉由業內熟知之方法來測定，例如在擴增培養中測定最大群倍增次數。 亦可使用業內已知之其他技術來分離胎盤幹細胞與其他胎盤細胞，例如選擇性生長期望細胞(正向選擇)、選擇性破壞不期望細胞(負向選擇)；在混合群中基於差別細胞可凝集性使用(例如)大豆凝集素進行分離；冷凍-解凍程序；過濾；常規及區帶離心；離心淘洗(逆流離心)；單位重力分離；逆流分配；電泳；及諸如此類。 5.6 胎盤幹細胞之培養5.6.1 培養基 可使用分離之胎盤幹細胞或胎盤細胞群或生長出胎盤細胞之細胞或胎盤組織來起始或接種細胞培養。一般將細胞轉移至未經塗佈或經細胞外基質或配體(例如層黏蛋白(laminin)、膠原(例如，天然或變性)、明膠、纖連蛋白、鳥胺酸、玻連蛋白(vitronectin)及細胞外膜蛋白(例如，MATRIGEL(BD Discovery Labware,Bedford,Mass.)))塗佈之無菌組織培養器皿中。 胎盤幹細胞可在業內承認為可接受用於培養幹細胞之任何培養基中及任何條件下培養。較佳地，培養基包含血清。胎盤幹細胞可在(例如)以下培養基中培養：DMEM-LG(杜貝克氏改良必需培養基(Dulbecco's Modified Essential Medium)，低葡萄糖)/MCDB 201(雞纖維母細胞基礎培養基)，其含有ITS(胰島素-轉鐵蛋白-硒)、LA+BSA(亞麻油酸-牛血清白蛋白)、右旋糖、L-抗壞血酸、PDGF、EGF、IGF-1及青黴素/鏈黴素；DMEM-HG(高葡萄糖)，其包含10%胎牛血清(FBS)；DMEM-HG，其包含15% FBS；IMDM(伊斯考夫改良杜貝克氏培養基，Iscove's modified Dulbecco's medium)，其包含10% FBS、10%馬血清及氫化可體松；M199，其包含10% FBS、EGF及肝素；α-MEM(最小必需培養基)，其包含10% FBS、GlutaMAXTM及正大黴素(gentamicin)；DMEM，其包含10% FBS、GlutaMAXTM及正大黴素等。較佳培養基係DMEM-LG/MCDB-201，其包含2% FBS、ITS、LA+BSA、右旋糖、L-抗壞血酸、PDGF、EGF及青黴素/鏈黴素。 可用於培養胎盤幹細胞之其他培養基包括DMEM(高或低葡萄糖)、伊格爾氏基礎培養基(Eagle's basal medium)、漢姆氏F10培養基(Ham's F10 medium，F10)、漢姆氏F-12培養基(F12)、伊斯考夫改良杜貝克氏培養基、間質幹細胞生長培養基(MSCGM)、賴氏L-15培養基(Liebovitz's L-15 medium)、MCDB、DMEM/F12、RPMI 1640、高級DMEM(Gibco)、DMEM/MCDB201(Sigma)及CELL-GRO FREE。 培養基可補充有一或多種組份，包括(例如)血清(例如，胎牛血清(FBS)，較佳約2-15%(v/v)；馬類(馬)血清(ES)；人類血清(HS))；β-巰基乙醇(BME)，較佳約0.001%(v/v)；一或多種生長因子，例如血小板衍生之生長因子(PDGF)、表皮生長因子(EGF)、鹼性纖維母細胞生長因子(bFGF)、胰島素樣生長因子-1(IGF-1)、白血病抑制因子(LIF)、血管內皮生長因子(VEGF)及紅血球生成素(EPO)；胺基酸，包括L-纈胺酸；及一或多種用於控制微生物污染之抗生素及/或抗黴劑，例如青黴素G、硫酸鏈黴素、雙性黴素B、正大黴素及製黴菌素(nystatin)，該等係單獨或組合使用。 亦可使用本文所揭示之任一培養方法及培養基來培養胎盤幹細胞並使其增殖。 5.6.2 胎盤幹細胞之擴增及增殖 在分離胎盤幹細胞(例如，與至少50%之在活體內通常與幹細胞或幹細胞群連接之胎盤細胞分離)後，幹細胞或幹細胞群可在活體外增殖及擴增。類似地，在產生胎盤幹細胞後，該等細胞亦可在活體外增殖及擴增。舉例而言，可將胎盤幹細胞在組織培養容器(例如盤、燒瓶、多孔板或諸如此類)中培養足夠時間以使胎盤幹細胞可增殖至70-90%全滿，亦即，直至胎盤幹細胞及其子代佔據組織培養容器中70-90%之培養表面積。 可在培養器皿中以允許細胞生長之密度接種胎盤幹細胞。舉例而言，胎盤幹細胞可以低密度(例如，約1,000至約5,000細胞/cm2)至高密度(例如，約50,000細胞/cm2或更高)來接種。在一較佳實施例中，胎盤幹細胞係在存於空氣中之約0至約5體積% CO2下培養。在一些較佳實施例中，胎盤幹細胞係在存於空氣中之約2%至約25% O2、較佳在存於空氣中之約5%至約20% O2下培養。胎盤幹細胞較佳在約25℃至約40℃、較佳37℃下培養。胎盤幹細胞較佳係在培育器中培養。培養基可使用(例如)生物反應器來靜置或攪動。胎盤幹細胞較佳係在低氧化應力(例如，添加有麩胱甘肽、抗壞血酸、過氧化氫酶、生育酚、N-乙醯基半胱胺酸或諸如此類)下生長。 在達成70%-90%全滿後，胎盤幹細胞可傳代。舉例而言，可使用業內熟知技術對細胞進行酶促處理(例如胰蛋白酶消化)，以將其自組織培養表面分離。在藉由吸液移除胎盤幹細胞並對細胞進行計數後，將約20,000-100,000個幹細胞、較佳約50,000個胎盤幹細胞傳代至含有新鮮培養基之新培養容器中。通常，新培養基與移出幹細胞之培養基具有相同類型。本文提供已傳代至少1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、12、14、16、18或20次或更多次之胎盤幹細胞群及其組合。 5.7 胎盤幹細胞之保藏 胎盤幹細胞可保藏(亦即，置放)於允許長期儲存之條件下或抑制因(例如)細胞凋亡或壞死所致細胞死亡之條件下。 胎盤幹細胞可使用(例如)包含細胞凋亡抑制劑、壞死抑制劑及/或含氧全氟碳之組合物來保藏，如美國專利申請公開案第2007/0190042號中所述。 在一實施例中，本文提供保藏胎盤幹細胞之方法，其包含使該等胎盤幹細胞與包含細胞凋亡抑制劑及含氧全氟碳之幹細胞收集組合物接觸，其中該細胞凋亡抑制劑以足夠量存在足夠時間，從而與未接觸細胞凋亡抑制劑之胎盤幹細胞群相比，減少或防止胎盤幹細胞群中之細胞凋亡。在一具體實施例中，該細胞凋亡抑制劑係半胱天冬酶抑制劑。在另一具體實施例中，該細胞凋亡抑制劑係JNK抑制劑。在一更具體實施例中，該JNK抑制劑不調節該等胎盤幹細胞之分化或增殖。在另一實施例中，該幹細胞收集組合物在分離相中包含該細胞凋亡抑制劑及該含氧全氟碳。在另一實施例中，該幹細胞收集組合物在乳液中包含該細胞凋亡抑制劑及該含氧全氟碳。在另一實施例中，幹細胞收集組合物另外包含乳化劑(例如卵磷脂)。在另一實施例中，該細胞凋亡抑制劑及該全氟碳在接觸幹細胞時介於約0℃與約25℃之間。在另一更具體實施例中，該細胞凋亡抑制劑及該全氟碳在接觸幹細胞時介於約2℃與10℃之間，或介於約2℃與約5℃之間。在另一更具體實施例中，該接觸係在該等胎盤幹細胞之轉運期間實施。在另一更具體實施例中，該接觸係在該幹細胞群之冷凍及解凍期間實施。 在另一實施例中，胎盤幹細胞可藉由包含以下之方法來保藏：使該等胎盤幹細胞與細胞凋亡抑制劑及器官保藏化合物接觸，其中該細胞凋亡抑制劑以足夠量存在足夠時間，從而與未接觸細胞凋亡抑制劑之胎盤幹細胞相比，減少或防止胎盤幹細胞之細胞凋亡。在一具體實施例中，器官保藏化合物係UW溶液(闡述於美國專利第4,798,824號中；亦稱作ViaSpan；亦參見Southard等人，Transplantation 49(2)：251-257(1990))或Stern等人，美國專利第5,552,267號中所述之溶液。在另一實施例中，該器官保藏化合物係羥乙基澱粉、乳糖酸、棉子糖或其組合。 在另一實施例中，使欲用於產生胎盤幹細胞之胎盤幹細胞在灌注期間與包含細胞凋亡抑制劑及含氧全氟碳之幹細胞收集組合物、器官保藏化合物或其組合接觸。在另一實施例中，使欲用於產生胎盤幹細胞之該等胎盤幹細胞在組織破碎(例如酶促消化)期間接觸。在另一實施例中，在藉由灌注收集後或在藉由組織破碎(例如酶促消化)收集後，使胎盤細胞與該幹細胞收集複合物接觸。 通常，在胎盤幹細胞收集、富集及分離期間，較佳使因缺氧及機械應力所致之細胞應力降至最低或消除該應力。因此，在該方法之另一實施例中，在該保藏期間，使欲用於產生胎盤幹細胞之胎盤幹細胞在收集、富集或分離期間於缺氧條件下暴露短於6小時，其中缺氧條件係氧濃度低於正常血氧濃度。在一更具體實施例中，在該保藏期間，使該等胎盤幹細胞在該缺氧條件下暴露短於2小時。在另一更具體實施例中，使該等胎盤幹細胞在收集、富集或分離期間於該缺氧條件下暴露短於1小時，或短於30分鐘，或不暴露於缺氧條件下。在另一具體實施例中，使該等胎盤幹細胞在收集、富集或分離期間不暴露於剪切應力下。 可將本文所述胎盤幹細胞以及欲用於產生胎盤幹細胞之胎盤幹細胞冷凍保藏於(例如)小型容器(例如安瓿)中之冷凍保藏培養基中。適宜冷凍保藏培養基包括(但不限於)培養基，包括(例如)生長培養基或細胞冷凍培養基，例如市售細胞冷凍培養基，例如C2695、C2639或C6039(Sigma)。冷凍保藏培養基較佳以(例如)約10%(v/v)之濃度包含DMSO(二甲基亞碸)。冷凍保藏培養基可包含其他試劑，例如勃脈力(Plasmalyte)、含有或不含甘油之甲基纖維素。在冷凍保藏期間，較佳使幹細胞以約1℃/min冷卻。較佳冷凍保藏溫度為約-80℃至約-180℃，較佳約-125℃至約-140℃。在解凍以供使用之前，可將冷凍保藏之細胞轉移至液氮中。在一些實施例中，例如，在安瓿達到約-90℃後，將其轉移至液氮儲存區。較佳使冷凍保藏之細胞在約25℃至約40℃之溫度下解凍，較佳達到約37℃之溫度。 5.8 胎盤細胞之使用5.8.1 包含胎盤細胞之組合物 本文所提供疼痛治療方法可使用包含胎盤幹細胞或來自其之生物分子之組合物。本文所提供胎盤幹細胞群可以相同方式與任何生理上可接受或醫學上可接受之化合物、組合物或器件組合以供用於(例如)研究或治療。 5.8.1.1 冷凍保藏之胎盤細胞 可對本文所提供胎盤細胞進行保藏，例如冷凍保藏以供隨後使用。冷凍保藏細胞(例如幹細胞)之方法為業內所熟知。胎盤幹細胞可以易於投與個體之形式來製備。舉例而言，本文所述胎盤幹細胞可含於適於醫學用途之容器內。此一容器可係(例如)無菌塑膠袋、燒瓶、罐、小瓶或胎盤細胞群可易於自其分散之其他容器。舉例而言，容器可係血袋或適於向接受者靜脈內投與液體之其他醫學上可接受之塑膠袋。容器較佳係容許冷凍保藏胎盤幹細胞之容器。 冷凍保藏之胎盤幹細胞可包含衍生自單一供體或多個供體之胎盤幹細胞。胎盤幹細胞可與既定接受者完全HLA匹配，或部分或完全HLA失配。 因此，在一實施例中，本文在容器中提供包含胎盤幹細胞之組合物。在一具體實施例中，胎盤幹細胞經或已經冷凍保藏。在另一具體實施例中，容器係袋、燒瓶、小瓶或罐。在更具體實施例中，該袋係無菌塑膠袋。在一更具體實施例中，該袋適於、允許或促進靜脈內投與該等胎盤幹細胞。袋可包含多個內腔或隔室，其互相連接以允許胎盤幹細胞及一或多種其他溶液(例如藥物)在投與之前或期間混合。在另一具體實施例中，組合物包含一或多種促進與其組合之幹細胞群之冷凍保藏之化合物。在另一具體實施例中，該等胎盤幹細胞含於生理上可接受之水性溶液內。在一更具體實施例中，該生理上可接受之水性溶液係0.9%NaCl溶液。在另一具體實施例中，該等胎盤幹細胞與該等胎盤幹細胞之接受者HLA匹配。在另一具體實施例中，該等胎盤幹細胞與該等胎盤幹細胞之接受者至少部分HLA失配。在另一具體實施例中，該等胎盤幹細胞來自複數個供體。 5.8.1.2 醫藥組合物 可將分離之胎盤幹細胞群或包含分離之胎盤幹細胞之細胞群調配為醫藥組合物以供在活體內使用，例如用於本文所提供治療方法。該等醫藥組合物在醫藥上可接受之載劑(例如鹽水溶液或其他已接受用於活體內投與之生理上可接受之溶液)中包含胎盤幹細胞或包含分離之胎盤幹細胞之細胞群。本文所述包含分離之胎盤幹細胞之醫藥組合物可包含本文其他地方所述分離之胎盤幹細胞群或分離之胎盤幹細胞中之任一者或任一組合。醫藥組合物可包含胎兒、母體或胎兒及母體分離細胞二者。本文所提供醫藥組合物可進一步包含得自單一個體、臍帶或胎盤或得自複數個個體、臍帶或胎盤之分離之胎盤幹細胞。可將本文其他地方所述之任一胎盤幹細胞調配為醫藥組合物，如下文所述。 本文所提供醫藥組合物可包含任一數目之分離之胎盤幹細胞。舉例而言，在不同實施例中，單一單位劑量之分離之胎盤幹細胞可包含約、至少或不超過1×105、5×105、1×106、5×106、1×107、2×107、2.5×107、3×107、3.5×107、4×107、4.5×107、5×107、5.5×107、6×107、6.5×107、7×107、7.5×107、8×107、8.5×107、9×107、9.5×107、1×108、5×108、1×109、5×109、1×1010、5×1010、1×1011或更多分離之細胞。在某些實施例中，單一單位劑量之分離之胎盤幹細胞可包含約、至少或不超過1×105至約1×106、約1×105至約1×107、約1×106至約1×107、約1×106至約1×108、約1×107至約1×108、約1×107至約1×109、約1×108至約1×1010、約1×109至約1×1010或約1×1010至約1×1011胎盤幹細胞。在特定實施例中，胎盤幹細胞存於適於全身(例如靜脈內(IV))投與之醫藥組合物中。在其他特定實施例中，胎盤幹細胞存於適於局部投與之醫藥組合物中。 包含單一或多個單位劑量之分離之胎盤幹細胞之醫藥組合物可結合本文所述方法來投與。在一實施例中，投與可包含投與單一單位劑量之胎盤幹細胞。在另一實施例中，投與可包含投與多個單位劑量之胎盤幹細胞。投與可經由(例如)個別或多次注射(例如1、5、10、15、20、25、30、35、40、45或50次局部或全身注射)來達成。 本文所提供醫藥組合物包含具有50%或更多存活細胞之細胞群(亦即，群中至少50%之細胞有功能或活著)。較佳地，群中至少60%之細胞存活。更佳地，醫藥組合物之群中至少70%、80%、90%、95%或99%之細胞存活。 本文所提供醫藥組合物可包含一或多種(例如)促進移植物植入之化合物(例如，抗T細胞受體抗體、免疫抑制劑或諸如此類)；穩定劑，例如白蛋白、葡聚糖40、明膠、羥乙基澱粉、勃脈力(Plasmalyte)及諸如此類。 在一實施例中，在調配為可注射溶液時，醫藥組合物包含約1%至1.5% HSA及約2.5%葡聚糖。在一較佳實施例中，醫藥組合物在包含5% HSA及10%葡聚糖，視情況以(例如)10 mg/kg包含免疫抑制劑(例如環孢靈A)之溶液中包含約5×106細胞/毫升至約2×107細胞/毫升。 在其他實施例中，醫藥組合物(例如溶液)包含複數個細胞(例如分離之胎盤幹細胞)，其中該醫藥組合物包含約1.0±0.3×106細胞/毫升至約5.0±1.5×106細胞/毫升。在其他實施例中，醫藥組合物包含約1.5×106細胞/毫升至約3.75×106細胞/毫升。在其他實施例中，醫藥組合物包含約1×106細胞/mL至約50×106細胞/mL、約1×106細胞/mL至約40×106細胞/mL、約1×106細胞/mL至約30×106細胞/mL、約1×106細胞/mL至約20×106細胞/mL、約1×106細胞/mL至約15×106細胞/mL或約1×106細胞/mL至約10×106細胞/mL。在某些實施例中，醫藥組合物不包含可見細胞團塊(即，無大細胞團塊)，或實質上無該等可見團塊。本文所用「大細胞團塊」意指不放大即可見(例如裸眼可見)之細胞聚集物，且一般係指大於約150微米之細胞聚集物。在一些實施例中，醫藥組合物包含約2.5%、3.0%、3.5%、4.0%、4.5%、5.0%、5.5%、6.0%、6.5%、7.0%、7.5%8.0%、8.5%、9.0%、9.5%或10%葡聚糖(例如葡聚糖-40)。在一具體實施例中，該組合包含約7.5%至約9%葡聚糖-40。在一具體實施例中，該組合物包含約5.5%葡聚糖-40。在某些實施例中，醫藥組合物包含約1%至約15%人血清白蛋白(HSA)。在具體實施例中，醫藥組合物包含約1%、2%、3%、4%、5%、6%、7%、8%、9%、10%、11%、12%、13%、14%或15% HSA。在一具體實施例中，該等細胞已經冷凍保藏及解凍。在另一具體實施例中，該等細胞已經由70 μM至100 μM過濾器過濾。在另一具體實施例中，該組合物不包含可見細胞團塊。在另一具體實施例中，該組合物包含少於約200個細胞團塊/106細胞，其中該等細胞團塊僅在顯微鏡(例如光學顯微鏡)下可見。在另一具體實施例中，該組合物包含少於約150個細胞團塊/106細胞，其中該等細胞團塊僅在顯微鏡(例如光學顯微鏡)下可見。在另一具體實施例中，該組合物包含少於約100個細胞團塊/106細胞，其中該等細胞團塊僅在顯微鏡(例如光學顯微鏡)下可見。 在一具體實施例中，醫藥組合物包含約1.0±0.3×106細胞/毫升、約5.5%葡聚糖-40(w/v)、約10% HSA(w/v)及約5% DMSO(v/v)。 在其他實施例中，醫藥組合物在包含10%葡聚糖-40之溶液中包含複數個細胞(例如複數個分離之胎盤幹細胞)，其中醫藥組合物包含約1.0±0.3×106細胞/毫升至約5.0±1.5×106細胞/毫升，且其中該組合物不包含肉眼可見之細胞團塊(即，不包含大細胞團塊)。在一些實施例中，醫藥組合物包含約1.5×106細胞/毫升至約3.75×106細胞/毫升。在一具體實施例中，該等細胞已經冷凍保藏及解凍。在另一具體實施例中，該等細胞已經由70 μM至100 μM過濾器過濾。在另一具體實施例中，該組合物包含少於約200個小細胞團塊(亦即，僅放大可見之細胞團塊)/106細胞。在另一具體實施例中，醫藥組合物包含少於約150個小細胞團塊/106細胞。在另一具體實施例中，醫藥組合物包含少於約100個小細胞團塊/106細胞。在另一具體實施例中，醫藥組合物包含少於15%、14%、13%、12%、11%、10%、9%、8%、7%、6%、5%、4%、3%或2% DMSO，或少於1%、0.9%、0.8%、0.7%、0.6%、0.5%、0.4%、0.3%、0.2%或0.1% DMSO。 本文另外提供包含細胞之組合物，其中該等組合物係藉由本文所揭示方法中之一者來產生。舉例而言，在一實施例中，醫藥組合物包含細胞，其中醫藥組合物係藉由包含以下之方法來產生：過濾包含胎盤幹細胞之溶液以形成經過濾含細胞溶液；(例如)在冷凍保藏之前，用第一溶液將經過濾含細胞溶液稀釋至約1×106至50×106、1×106至40×106、1×106至30×106、1×106至20×106、1×106至15×106或1×106至10×106細胞/毫升；及用包含葡聚糖但不包含人血清白蛋白(HSA)之第二溶液稀釋所得經過濾含細胞溶液以產生該組合物。在某些實施例中，該稀釋係欲稀釋至不超過約15×106細胞/毫升。在某些實施例中，該稀釋係欲稀釋至不超過約10±3×106細胞/毫升。在某些實施例中，該稀釋係欲稀釋至不超過約7.5×106細胞/毫升。在某些其他實施例中，若經過濾含細胞溶液在稀釋前包含少於約15×106細胞/毫升，則過濾係可選的。在某些其他實施例中，若經過濾含細胞溶液在稀釋前包含少於約10±3×106細胞/毫升，則過濾係可選的。在某些其他實施例中，若經過濾含細胞溶液在稀釋前包含少於約7.5×106細胞/毫升，則過濾係可選的。 在一具體實施例中，在使用第一稀釋溶液之該過濾與使用第二稀釋溶液之該過濾之間，將細胞冷凍保藏。在另一具體實施例中，第一稀釋溶液包含葡聚糖及HSA。第一稀釋溶液或第二稀釋溶液中之葡聚糖可係具有任何分子量之葡聚糖，例如分子量為約10 kDa至約150 kDa之葡聚糖。在一些實施例中，該第一稀釋溶液或該第二溶液中之該葡聚糖係約2.5%、3.0%、3.5%、4.0%、4.5%、5.0%、5.5%、6.0%、6.5%、7.0%、7.5%、8.0%、8.5%、9.0%、9.5%或10%葡聚糖。在另一具體實施例中，該第一稀釋溶液或該第二稀釋溶液中之葡聚糖係葡聚糖-40。在另一具體實施例中，該第一稀釋溶液及該第二稀釋溶液中之葡聚糖係葡聚糖-40。在另一具體實施例中，該第一稀釋溶液中之該葡聚糖-40係5.0%葡聚糖-40。在另一具體實施例中，該第一稀釋溶液中之該葡聚糖-40係5.5%葡聚糖-40。在另一具體實施例中，該第二稀釋溶液中之該葡聚糖-40係10%葡聚糖-40。在另一具體實施例中，該包含HSA之溶液中之該HSA係1%至15% HSA。在另一具體實施例中，該包含HSA之溶液中之該HSA係約1%、2%、3%、4%、5%、6%、7%、8%、9%、10%、11%、12%、13%、14%或15% HSA。在另一具體實施例中，該包含HSA之溶液中之該HSA係10% HSA。在另一具體實施例中，該第一稀釋溶液包含HSA。在一更具體實施例中，該第一稀釋溶液中之該HSA係10% HSA。在另一具體實施例中，該第一稀釋溶液包含冷凍保護劑。在一更具體實施例中，該冷凍保護劑係DMSO。在另一具體實施例中，該第二稀釋溶液中之該葡聚糖-40係約10%葡聚糖-40。在另一具體實施例中，該包含細胞之組合物包含約7.5%至約9%葡聚糖。在另一具體實施例中，醫藥組合物包含約1.0±0.3×106細胞/毫升至約5.0±1.5×106細胞/毫升。在另一具體實施例中，醫藥組合物包含約1.5×106細胞/毫升至約3.75×106細胞/毫升。 在另一實施例中，醫藥組合物係由一種包含以下之方法製備：(a)在冷凍保藏之前過濾包含胎盤幹細胞之含細胞溶液以產生經過濾之含細胞溶液；(b)冷凍保藏經過濾之含細胞溶液中之細胞，以約1×106至50×106個、1×106至40×106個、1×106至30×106個、1×106至20×106個、1×106至15×106個或1×106至10×106個細胞/毫升；(c)使細胞解凍；及(d)經過濾之含細胞溶液用葡聚糖-40溶液以約1：1至約1：11(v/v)稀釋。在某些實施例中，若在步驟(a)之前細胞數目少於約10±3×106個細胞/毫升，則過濾係選擇性的。在一更特定實施例中，步驟(b)中之細胞以約10±3×106個細胞/毫升冷凍保藏。在一更特定實施例中，步驟(b)中之細胞冷凍保藏在一種包含約5%至約10%葡聚糖-40及HAS之溶液中。在某些實施例中，步驟(b)中之稀釋係稀釋至不超過約15×106個細胞/毫升。 在另一實施例中，醫藥組合物係藉由一種包含以下之方法製備：(a)使PDACTM懸浮於包含10% HAS之5.5%葡聚糖-40溶液中以形成含細胞溶液；(b)經由70 μM過濾器過濾含細胞溶液；(c)用一種包含5.5%葡聚糖-40、10% HAS及5% DMSO之溶液將含細胞溶液稀釋至約1×106至50×106個、1×106至40×106個、1×106至30×106個、1×106至20×106個、1×106至15×106個或1×106至10×106個細胞/毫升；(d)冷凍保藏細胞；(e)使細胞解凍；及(f)含細胞溶液用10%葡聚糖-40以1：1至1：11(v/v)稀釋。在某些實施例中，步驟(c)中之稀釋係稀釋至不超過約15×106個細胞/毫升。在某些實施例中，步驟(c)中之稀釋係稀釋至不超過約10±3×106個細胞/mL。在某些實施例中，步驟(c)中之稀釋係稀釋至不超過約7.5×106個細胞/mL。 在另一實施例中，包含細胞之組合物係藉由一種包含以下之方法製備：(a)將多數胎盤幹細胞離心以收集細胞；(b)將細胞再懸浮於5.5%葡聚糖-40中；(c)將細胞離心以收集細胞；(d)將細胞再懸浮於包含10% HAS之5.5%葡聚糖-40溶液中；(e)經由70 μM過濾器過濾細胞；(f)在5.5%葡聚糖-40、10% HAS及5% DMSO中將細胞稀釋至約1×106至50×106個、1×106至40×106個、1×106至50×106個、1×106至20×106個、1×106至15×106個或1×106至10×106個細胞/毫升；(g)冷凍保藏細胞；(h)使細胞解凍；及(i)細胞用10%葡聚糖-40以1：1至1：11(v/v)稀釋。在某些實施例中，步驟(f)中之稀釋係稀釋至不超過約15×106個細胞/毫升。在某些實施例中，步驟(f)中之稀釋係稀釋至不超過約10±3×106個細胞/mL。在某些實施例中，步驟(f)中之稀釋係稀釋至不超過約7.5×106個細胞/mL。在某些實施例中，若細胞數目少於約10±3×106個細胞/毫升，則過濾係選擇性的。 本文所述包含分離之胎盤細胞之組合物(例如醫藥組合物)可包含本文所述任何分離之胎盤幹細胞。 可使用適於投與細胞產物之其他可注射調配物。 在某些實施例中，可在冷凍保藏之前或之後將胎盤幹細胞囊封於(例如)藻酸鹽中。在某些其他實施例中，可將胎盤幹細胞與富血小板血漿組合以供(例如)局部注射或局部投與應用。在具體實施例中，富血小板血漿係自體富血小板血漿，例如係經投與胎盤幹細胞之患有疼痛之個體之自體血漿。在其他具體實施例中，富血小板血漿係經投與胎盤幹細胞之患有疼痛之個體之同種異體血漿。在另一具體實施例中，該富血小板血漿衍生自胎盤灌注液。在其他具體實施例中，組合物中胎盤幹細胞與富血小板血漿之體積比或胎盤幹細胞之數目與血小板數目之間之比率介於約10：1與1：10之間；介於約100：1與1：100之間；或係約1：1。 在一實施例中，醫藥組合物包含分離之胎盤細胞或PDACTM，其實質上或完全不源自母體，亦即，具有胎兒基因型；例如至少約90%、95%、98%、99%或約100%不源自母體。 在一具體實施例中，醫藥組合物另外包含並非得自胎盤之幹細胞。 本文所提供組合物(例如醫藥組合物)中之分離之胎盤幹細胞可包含衍生自單一供體或多個供體之胎盤幹細胞。分離之胎盤細胞可與既定接受者完全HLA匹配，或部分或完全HLA失配。 5.9 胎盤幹細胞條件培養基 本文所提供胎盤幹細胞(包括臍帶幹細胞)可用於產生條件培養基，例如用於治療患有疼痛之個體或改善個體之疼痛。在不同實施例中，條件培養基包含胎盤幹細胞已生長至少1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14天或更久之培養基。在其他實施例中，條件培養基包含胎盤幹細胞已生長至至少30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%全滿或最多100%全滿之培養基。在另一實施例中，條件培養基包含已培養胎盤幹細胞及非胎盤、非臍帶幹細胞之培養基。 5.10 包含胎盤細胞之基質 本文另外提供包含胎盤幹細胞之基質、水凝膠、支架及諸如此類。可將本文所提供胎盤幹細胞接種至天然基質(例如胎盤生物材料，例如羊膜材料)上。此一羊膜材料可係(例如)直接自哺乳動物胎盤解剖之羊膜；經固定或熱處理羊膜、實質上乾燥之(即，<20% H2O)羊膜、絨毛膜、實質上乾燥之絨毛膜、實質上乾燥之羊膜及絨毛膜及諸如此類。可接種胎盤幹細胞之較佳胎盤生物材料闡述於Hariri，美國申請公開案第2004/0048796號中。 可將本文所提供胎盤細胞懸浮於適於(例如)注射之水凝膠溶液中。適合於該等組合物之水凝膠包括自組裝肽，例如RAD16。亦可將胎盤幹細胞與(例如)藻酸鹽或富血小板血漿或其他含纖維蛋白基質組合以供局部注射。在一實施例中，可使包含胎盤幹細胞之水凝膠溶液在(例如)模具中硬化，以形成有細胞分散於其中之植入用基質。亦可培養存於此一基質中之胎盤幹細胞以使該等細胞在植入前以有絲分裂方式擴增。水凝膠可係(例如)有機聚合物(天然或合成)，其經由共價鍵、離子鍵或氫鍵交聯而產生三維開放晶格結構，該結構捕獲水分子形成凝膠。形成水凝膠之材料包括多糖(例如藻酸鹽)及其鹽、肽、聚磷嗪及聚丙烯酸酯(其以離子方式交聯)或嵌段聚合物(例如聚氧乙烯-聚丙二醇嵌段共聚物，其分別藉由溫度或pH交聯)。在一些實施例中，水凝膠或基質係生物可降解的。 在一些實施例中，基質包含原位可聚合凝膠(例如，參見美國專利申請公開案第2002/0022676號；Anseth等人，J.Control Release,78(1-3)：199-209(2002)；Wang等人，Biomaterials,24(22)：3969-80(2003))。 在一些實施例中，聚合物至少部分溶於水性溶液(例如水、緩衝鹽溶液或水性醇溶液)，該等聚合物具有帶電荷側基，或其單價離子鹽。具有可與陽離子反應之酸性側基之聚合物的實例係聚(磷腈)、聚(丙烯酸)、聚(甲基丙烯酸)、丙烯酸與甲基丙烯酸之共聚物、聚(乙酸乙烯酯)及磺酸化聚合物(例如磺酸化聚苯乙烯)。亦可使用藉由丙烯酸或甲基丙烯酸與乙烯基醚單體或聚合物之反應形成之具有酸性側基之共聚物。酸性基團之實例係羧酸基團、磺酸基團、鹵化(較佳氟化)醇基、酚OH基團及酸性OH基團。 可將胎盤幹細胞接種至三維框架或支架上且植入活體內。此一框架可與任何一或多種生長因子、細胞、藥物或其他組份組合植入，該等其他組份刺激組織形成或增強或改良本文其他地方所述之治療方法之實踐。 可用於本文所述治療方法中之支架之實例包括不織墊、多孔發泡體或自組裝肽。不織墊可使用包括乙醇酸與乳酸之合成可吸收共聚物(例如，PGA/PLA)(VICRYL,Ethicon公司，Somerville,N.J.)之纖維來形成。亦可使用由(例如)聚(ε-己內酯)/聚(乙醇酸)(PCL/PGA)共聚物組成、藉由諸如冷凍乾燥或凍乾等方法形成之發泡體(例如，參見美國專利第6,355,699號)作為支架。 在另一實施例中，支架係或包含奈米纖維支架，例如電紡奈米纖維支架。在一更具體實施例中，該奈米纖維支架包含聚(L-乳酸)(PLLA)、I型膠原、二氟亞乙烯與三氟乙烯之共聚物(PVDF-TrFE)、聚(-己內酯)、聚(L-交酯-共-ε-己內酯)[P(LLA-CL)](例如，75：25)及/或聚(3-羥基丁酸酯-共-3-羥基戊酸酯)(PHBV)及I型膠原。產生奈米纖維支架(例如電紡奈米纖維支架)之方法為業內已知。例如，參見Xu等人，Tissue Engineering 10(7)：1160-1168(2004)；Xu等人，Biomaterials 25：877-886(2004)；Meng等人，J.Biomaterials Sci.,Polymer Edition 18(1)：81-94(2007)。 亦可將本文所述胎盤幹細胞接種至生理上可接受之陶瓷材料上或與其接觸，該陶瓷材料包括(但不限於)磷酸一鈣、磷酸二鈣、磷酸三鈣、α-磷酸三鈣、β-磷酸三鈣及磷酸四鈣、羥磷灰石、氟磷灰石、硫酸鈣、氟化鈣、氧化鈣、碳酸鈣、磷酸鈣鎂、生物活性玻璃(例如BIOGLASS®)及其混合物。當前市售之生物相容性多孔陶瓷材料包括SURGIBONE®(CanMedica公司，Canada)、ENDOBON®(Merck Biomaterial France,France)、CEROS®(Mathys,AG,Bettlach,Switzerland)及礦化膠原骨移植產品(例如HEALOSTM(DePuy公司，Raynham,MA)及VITOSS®、RHAKOSSTM及CORTOSS®(Orthovita,Malvern,Pa.))。框架可係天然及/或合成材料之混合物、摻合物或複合物。 在另一實施例中，可將胎盤幹細胞接種至氈上或與其接觸，該氈可由(例如)自生物吸收性材料(例如PGA、PLA、PCL共聚物或摻合物或透明質酸)製備之多絲紗組成。 在另一實施例中，可將本文所述胎盤幹細胞接種至可具有複合結構之發泡體支架。可將該等發泡體支架模製為可用形狀。在一些實施例中，用(例如)0.1 M乙酸處理框架，之後在聚離胺酸、PBS及/或膠原中培育，之後接種胎盤細胞以增強細胞附著。可藉由諸如以下等方式來修飾基質外表面以改良細胞之附著或生長及組織分化：對基質進行電漿塗佈，或添加一或多種蛋白質(例如，膠原、彈性纖維、網狀纖維)、糖蛋白、糖胺聚糖(例如，硫酸肝素、4-硫酸軟骨素、6-硫酸軟骨素、硫酸皮膚素、硫酸角蛋白等)、細胞基質及/或其他材料(例如，但不限於明膠、藻酸鹽、瓊脂、瓊脂糖及植物膠)及諸如此類。 在一些實施例中，支架包含使其不形成血栓之材料或經該等材料處理。該等處理及材料亦可促進並維持內皮生長、遷移及細胞外基質沈積。該等材料及處理之實例包括(但不限於)天然材料，例如基膜蛋白，例如層黏蛋白及IV型膠原；合成材料，例如EPTFE；及分段聚胺基甲酸酯脲聚矽氧，例如PURSPANTM(The Polymer Technology Group公司，Berkeley,Calif.)。支架亦可包含抗血栓形成劑，例如肝素；支架亦可經處理以改變表面電荷(例如，用電漿塗佈)，之後接種胎盤幹細胞。 5.10.1遺傳修飾之胎盤幹細胞 在另一態樣中，本文提供胎盤細胞，其經遺傳修飾以(例如)產生所關注核酸或多肽。遺傳修飾可使用(例如)基於病毒之載體來完成，該等載體包括(但不限於)非整合型複製載體，例如乳突狀瘤病毒載體、SV40載體、腺病毒載體；整合型病毒載體，例如逆轉錄病毒載體或腺相關病毒載體；或複製缺陷型病毒載體。將DNA引入細胞之其他方法包括使用脂質體、電穿孔、粒子槍、直接注射DNA或諸如此類。 可用受一或多種適宜表現控制元件控制或與其可操作連接之DNA對幹細胞進行(例如)轉化或轉染，該等元件係(例如)啟動子或增強子序列、轉錄終止子、多腺苷酸化位點、內部核糖體進入位點。較佳地，此一DNA納入可選擇標記物。在引入外源DNA後，可使經改造幹細胞在(例如)強化培養基中生長且隨後轉換為選擇性培養基。在一實施例中，用於改造胎盤細胞之DNA包含編碼所關注多肽(例如細胞介素、生長因子、分化劑或治療性多肽)之核苷酸序列。 用於改造幹細胞之DNA可包含業內已知之任何啟動子以在哺乳動物細胞(例如人類細胞)中驅動表現核苷酸序列。舉例而言，啟動子包括(但不限於)CMV啟動子/增強子、SV40啟動子、乳突狀瘤病毒啟動子、Epstein-Barr病毒啟動子、彈性蛋白基因啟動子及諸如此類。在一具體實施例中，啟動子可調節以使得僅在期望時表現核苷酸序列。啟動子可係誘導型(例如，彼等與金屬硫蛋白及熱休克蛋白相關者)或組成型。 在另一具體實施例中，啟動子具有組織特異性或展現組織特異性。該等啟動子之實例包括(但不限於)：髓磷脂鹼性蛋白基因控制區(Readhead等人，1987,Cell 48：703)(寡樹突細胞)；彈性蛋白酶I基因控制區(Swit等人，1984,Cell 38：639；Ornitz等人，1986,Cold Spring Harbor Symp.Quant.Biol.50：399；MacDonald,1987,Hepatology 7：425)(胰腺腺泡細胞)；胰島素基因控制區(Hanahan,1985,Nature 315：115)(胰腺β細胞)；肌凝蛋白輕鏈-2基因控制區(Shani,1985,Nature 314：283)(骨骼肌)。 可改造胎盤細胞以「剔除(knock out)」或「敲低(knock down)」一或多個基因之表現。可藉由(例如)同源重組使細胞中之天然基因完全失活來(例如)抑制表現，從而降低該基因之表現。在一實施例中，例如，藉由可正向選擇標記物(例如neo)中斷編碼蛋白質重要區域之外顯子或該區域5'處之外顯子，從而防止靶基因產生正常mRNA且使該基因失活。亦可藉由在一部分基因中產生缺失或藉由使整個基因缺失來使基因失活。藉由使用具有兩個與靶基因同源且在基因組中相距甚遠之區域之構築體，可使插入該兩個區域之序列缺失(Mombaerts等人，1991,Proc.Nat.Acad.Sci.U.S.A.88：3084)。亦可使用抑制靶基因表現之反義DNAzyme、小干擾RNA及核酶分子來降低幹細胞中之靶基因活性程度。舉例而言，已顯示抑制主要組織相容性基因複合體(HLA)之表現之反義RNA分子就免疫反應而言用途最廣泛。可利用三螺旋分子來降低靶基因之活性程度。例如，參見L.G.Davis等人(編輯)，1994,BASIC METHODS IN MOLECULAR BIOLOGY，第2版，Appleton & Lange,Norwalk,Conn.，其係以引用方式併入本文中。 在一具體實施例中，可用包含編碼所關注多肽之核苷酸序列之核酸分子來對胎盤細胞進行遺傳修飾，其中所關注多肽之表現可受外因(例如多肽、有機小分子或諸如此類)控制。此一多肽可係治療性多肽。在一更具體實施例中，所關注多肽係IL-12或介白素-1受體拮抗劑(IL-1Ra)。在另一更具體實施例中，所關注多肽係介白素-1受體拮抗劑與二氫葉酸還原酶(DHFR)之融合物，且外因係抗葉酸劑(例如胺甲喋呤(methotrexate))。此一構築體可用於改造在與胺甲喋呤接觸後表現IL-1Ra或IL-1Ra與DHFR之融合物之胎盤細胞。此一構築體可用於(例如)治療類風濕性關節炎。在此實施例中，IL-1Ra與DHFR之融合物在暴露於抗葉酸劑(例如胺甲喋呤)後於轉譯中上調。因此，在另一具體實施例中，用於遺傳改造胎盤細胞之核酸可包含編碼第一多肽及第二多肽之核苷酸序列，其中該第一及第二多肽表現為融合蛋白，該融合蛋白在外因存在下於轉譯中上調。該多肽可瞬時或長期(例如，經數週或數月時間)表現。 此一核酸分子可另外包含編碼多肽之核苷酸序列，該多肽允許正向選擇經改造幹細胞或允許經改造幹細胞之可視化。在另一更具體實施例中，核苷酸序列編碼(例如)在適宜可視化條件下發螢光之多肽，例如螢光素酶(Luc)。在一更具體實施例中，此一核酸分子可包含IL-1Ra-DHFR-IRES-Luc，其在IRES係內部核糖體進入位點。 5.10.2 永生化胎盤幹細胞系 可藉由用含有生長促進基因(亦即，編碼在適宜條件下促進胎盤幹細胞生長之蛋白質的基因)之載體轉染使胎盤幹細胞條件性永生化，從而使得可藉由外在因子調節生長促進蛋白之產生及/或活性。在一較佳實施例中，生長促進基因係致癌基因，例如(但不限於)v-myc、N-myc、c-myc、p53、SV40大T抗原、多瘤大T抗原、E1a腺病毒或人類乳突狀瘤病毒之E7蛋白。 生長促進蛋白之外在調節可藉由將生長促進基因置於可外在調節之啟動子之控制下來達成，例如啟動子之活性可藉由(例如)使細胞與該啟動子對其有反應之化合物接觸來控制。在一實施例中，可利用受四環素(tet)控制之基因表現系統(參見Gossen等人，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89：5547-5551,1992；Hoshimaru等人，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 93：1518-1523,1996)。在不存在tet時，此載體內之受tet控制之反式活化因子(tTA)顯著活化ph CMV*-1(來自與tet操縱基因序列融合之人類細胞巨大病毒之最小啟動子)之轉錄。tTA係大腸桿菌(Escherichia coli)中轉座子-10衍生之tet抗性操縱子之抑制子(tetR)與單純疱疹病毒中VP16之酸性結構域之融合蛋白。無毒低濃度之tet(例如，0.01-1.0 μg/mL)幾乎完全消除tTA之反式活化。 在一實施例中，載體進一步含有編碼可選擇標記物(例如賦予抗藥性之蛋白質)之基因。細菌新黴素(neomycin)抗性基因(neo R )係一種該標記物，其可用於本文所述方法中。可藉由熟習此項技術者已知之方式來選擇載有neo R 之細胞，例如向生長培養基中添加(例如)100-200 μg/mL G418。 可藉由熟習此項技術者已知之多種方式中之任一者來達成轉染，包括(但不限於)逆轉錄病毒轉染。一般而言，可藉由與自載體生產細胞系收集之條件培養基與含有N2補充物之DMEM/F12之混合物一起培育來轉染細胞培養物。舉例而言，如上文所述製備之胎盤細胞培養物可在(例如)活體外5天後藉由在1體積之條件培養基及2體積之含有N2補充物之DMEM/F12中培育約20小時來感染。然後可如上文所述選擇載有可選擇標記物之經轉染細胞。 在轉染後，使培養物傳代至容許增殖(例如允許至少30%之細胞在24小時期間倍增)之表面上。較佳地，基質係聚鳥胺酸/層黏蛋白基質(由經聚鳥胺酸(10 μg/mL)及/或層黏蛋白(10 μg/mL)塗佈之組織培養塑膠組成)、聚離胺酸/層黏蛋白基質或經纖連蛋白處理之表面。然後每3-4天向培養物飼餵可補充有或未補充一或多種增殖促進因子之生長培養基。可在培養物低於50%全滿時將增殖促進因子添加至生長培養基中。 條件性永生化胎盤幹細胞系可在80-95%全滿時使用標準技術(例如胰蛋白酶消化)來傳代。在一些實施例中，直至約第二十次傳代為止，對於維持選擇(例如，對於含有新黴素抗性基因之細胞，藉由添加G418來維持)係有益的。亦可在液氮中冷凍細胞以供長期儲存。 可自如上所述製備之條件性永生化人類胎盤幹細胞系分離純系細胞系。一般而言，該等純系細胞系可使用標準技術(例如藉由有限稀釋或使用選殖環)來分離及擴增。純系細胞系一般可如上所述來飼餵及傳代。 一般可藉由在促進分化之培養條件下抑制生長促進蛋白之產生及/或活性來誘導可能(但不需)係純系之條件性永生化人類胎盤幹細胞系分化。舉例而言，若編碼生長促進蛋白之基因在可外在調節之啟動子控制下，則可修改條件(例如溫度或培養基組成)以抑制生長促進基因之轉錄。對於上文論述之受四環素控制之基因表現系統，分化可藉由添加四環素以抑制生長促進基因之轉錄來達成。一般而言，經4-5天添加1 μg/mL四環素足以起始分化。為促進進一步分化，生長培養基中可包括其他試劑。 6.實例6.1 實例1：使用胎盤幹細胞成功治療神經病性疼痛 此實例顯示，CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)可有效降低神經病性疼痛。 使用大鼠神經病性疼痛模型。將重175-200 g之雄性Sprague Dawley大鼠分為三個實驗動物組，其靜脈內接受1×106、3×106或1×107 PDACTM。陰性對照動物僅接受媒劑。陽性對照動物在手術後第11、14、18、21、25、28及35天接受50 mg/kg或100 mg/kg加巴噴丁(止痛劑)。 手術程序：在第0天(D0)，藉由IP注射克他明(85 mg/kg)/甲苯噻嗪(xylazine，5 mg/kg)混合物來誘導麻醉。自L4至S2棘突分離大鼠之左脊椎旁肌。使用小骨鉗謹慎地移除L6橫突以在視覺上鑑別L4-L6脊神經。分離左L5及L6脊神經並用5-0絲線牢固結紮。然後使動物復原。 在D7，作為基線評估所有組之疼痛敏感性。在D11、D14、D18、D21、D25、D28及D35，再次評估所有動物之疼痛敏感性。 在D-1，在施加疼痛之程序之前，將每一大鼠置於Plexiglas室內度過10-15分鐘之適應期。如下評估大鼠對Von Frey細絲分選(自最細8 g細絲直至最粗15 g細絲範圍內(8、10、15 g))之敏感性。將個別Von Frey細絲自底部方向向上施用至測試動物，且針點接觸大鼠後腿上每一爪(朝下)之中心，連續5次或直至出現反應。以所選不同細絲中之每一者重複測試，間隔最少90秒。若大鼠在一階段中抬爪至少3次，則可將其視為最低疼痛敏感性等級。 用加巴噴丁治療及所有動物之測試皆係在手術後第11、14、17、21、24及28天進行。在每一測試日治療接受加巴噴丁之動物，且在每次給藥後2小時，在一天中大致相同之時間進行測試。自研究排除在第7-8天因後肢缺乏肌肉緊張度或缺乏縮回反射而顯示運動缺陷證據之動物。 為在實驗期間評估疼痛敏感性，將大鼠置於Plexiglas室內度過15-20分鐘之適應期。隨後如上文建立基線疼痛閾值一般使用自最細0.6 g細絲直至最粗15 g範圍內(0.6、1.4、2、4、6、8、10、15 g)之Von Frey細絲來評估大鼠之觸覺異常性疼痛(刺激導致之不正常疼痛之疼痛)，但首先使最細Von Frey細絲接觸後爪連續5次或直至出現反應。若未出現反應，則以相同方式施用下一較粗細絲，重複直至獲得縮回反應。一旦獲得縮回反應，用逐漸變細之細絲再次測試該爪直至觀察不到反應。連續細絲之間之間隔保持在不超過約90秒。以此方式測試每一動物之兩隻後爪；首先測試右腿(經注射腿)，且隨後測試左腿。將引起反應所需最低量之力以克記錄為縮回閾值。 在每一測試日(D11、D14、D17、D21、D24、D28及D35)腹膜內(IP)投與加巴噴丁(GBP)。在第7或8天靜脈內(IV)投與PDACTM。 測試活動之時間線展示於下表1中。 結果 尤其在D21、D28及D35，與媒劑治療動物相比，以10×107劑量量投與PDACTM顯著改良分析中之敏感性分數；亦即，動物顯示異常性疼痛有所降低。參見圖1。此劑量之結果與50 mg/kg GBP相當。稱作TOPAR(總疼痛緩解)之累計疼痛緩解分數係根據治療後機械敏感性降低之曲線下面積(AUC)來計算。此分析確認，PDACTM顯著改良疼痛敏感性分數。參見圖2。因此，該等分析確認，PDACTM可用於治療疼痛。 6.2 實例2：確立PDAC TM在癌症疼痛及發炎性疼痛治療中之有效性之臨床前研究 此實例闡述證實CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)在癌症疼痛及發炎性疼痛治療中之有效性之研究。 6.2.1 骨癌疼痛 使用飼養在無菌屏障中之5週齡免疫受損雄性小鼠(CB17-SCRF；Taconic Laboratories)。在6週齡時，對機械及熱敏感性進行基線量測。在第二天，用100 mg/kg克他明及20 mg/kg甲苯噻嗪使小鼠麻醉且在左心室接種存於100 μL無血清DMEM/F12中之5×104 PC3-ML細胞。此程序始終在>80%之經接種小鼠之脛骨及股骨中產生骨骼腫瘤；然而，除了在腎上腺中產生之小腫瘤以外，PC3-ML細胞不轉移至任何軟組織器官。PC3-ML細胞經改造以穩定表現綠色螢光蛋白(eGFP)之發光變體，從而允許藉由螢光顯微術使細胞至骨骼之擴散可視化。 首先，在接種PC13-ML細胞後第1、4、7、10、14、21及28天量測機械及熱超敏性，以測定疼痛出現及持續之時程。一旦確定疼痛敏感性出現可量化且在統計學上顯著之變化，立即檢查胎盤幹細胞之效應。在出現疼痛後投與胎盤幹細胞，且在研究期間實施週期性疼痛評估。將PDACTM以(例如)0.1×106細胞、0.6×106細胞及1.5×106細胞/劑量之劑量投與實驗小鼠。對照動物僅接受媒劑。因此，例如，若一般在接種後第12天疼痛敏感性出現統計學上顯著之變化，則在該日在疼痛測試前以三種劑量中之一者投與PDACTM，且在第13、16、23及30天實施疼痛評估。視情況，若疼痛超敏性首先減弱，之後復發，則研究包括第二次投與PDACTM。 自研究排除在研究第一期(亦即，在出現疼痛後投與PDACTM)中未顯示疼痛敏感性變化之小鼠。 藉由收集脛骨及股骨來測定轉移性骨傷害之面積，之後在4%中固定48小時。然後使骨在0.5 mol/L EDTA中脫鈣7天，之後在30%蔗糖中培育以供冷凍保護，或在1%甲醛中培育以供長期儲存。收集厚80 μm之連續切片且使用螢光立體顯微術及轉移酶之形態量測分析來分析。 6.2.2 化學療法誘導之疼痛 此研究證實CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞抵抗由太平洋紫杉醇誘導之神經病性疼痛之有效性。在研究中，向小鼠(C57BL/6J)注射太平洋紫杉醇作為化學治療劑。已證實太平洋紫杉醇可在人類及動物二者中產生神經病性疼痛(例如，參見Authier等人，「Animal models of chemotherapy-evoked painful peripheral neuropathies,」Neurotherapeutics 6：620-629(2009)；Gauchan等人，2009；Golden及Johnson,2004)。 在投與太平洋紫杉醇之前測定小鼠中之基線敏感性。然後向小鼠投與一定劑量之太平洋紫杉醇(5 mg/kg，腹膜內)且在第1、4、7、10及14天量測機械及熱超敏性。在此模型中，疼痛敏感性通常在第14天達到峰值，且持續長達35天。在第14天，在測試前將PDACTM以(例如)0.1×106細胞、0.6×106細胞及1.5×106細胞/劑量之劑量投與實驗小鼠。對照動物僅接受媒劑。在第15、21、28及35天對所有動物實施疼痛敏感性評估。陽性對照動物接受以有效劑量投與之加巴噴丁或嗎啡。 6.2.3 發炎性疼痛模型 此研究證實CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞在發炎性疼痛模型中抵抗疼痛之有效性。 小鼠(C57BL/6J)在後爪之蹠面中接受20 μL皮下注射發炎劑量之完全弗氏佐劑(CFA；50%溶於鹽水中)。疼痛敏感性通常在注射CFA後3小時時達到峰值且可持續長達14天。在投與CFA後3小時將PDACTM以(例如)0.1×106細胞、0.6×106細胞及1.5×106細胞/劑量之劑量投與實驗小鼠。向陽性對照小鼠投與有效降低疼痛之劑量之非類固醇抗炎藥物，例如塞來昔布(CELEBREX®)。然後在第1、3、7及14天量測機械及熱超敏性。 對於上文每一疼痛研究，皆如上文實例1中所述使用Von Frey細絲來評估機械異常性疼痛。熱敏感性係使用Hargreaves程序來評估。Hargreaves分析藉由以下方式在自由移動之動物中量測傷害感受性敏感性：在動物站立於Plexiglas室中時將放射熱源集中於其後爪之蹠面上，並量測其爪自熱處縮回之潛伏期。冷敏感性將使用丙酮來評估；在此方法中，將一滴丙酮施加至後爪上，之後使其蒸發，並量測自表面縮回爪之潛伏期。 在每一研究中，PDACTM皆係IV投與尾靜脈。每一研究中之對照媒劑皆係存於鹽水緩衝液中之5%葡聚糖-40。 6.3 實例3：使用PDAC TM治療神經病性疼痛6.3.1 靜脈內投與病例1 個體表現為與投與太平洋紫杉醇相關之四肢神經病性疼痛。主治腫瘤科醫師指示，維持太平洋紫杉醇療法很有必要。使用疼痛品質評估量表來實施疼痛評估，且在0-10量表上指示所指示每一疼痛類型之疼痛品質。亦記錄累計分數。在疼痛評估後，藉由靜脈內輸注向個體投與存於生理鹽水中之1×109 CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)。在隨後之7天中監測個體之任何不良事件，且在投與後第7天再次評估疼痛。比較每一個別疼痛品質之分數及總累計疼痛分數與投與之前之分數。若大部分疼痛品質分數或累計分數在投與後未降低，則視情況藉由靜脈內輸注向個體第二次投與存於生理鹽水中之1×109 PDACTM。然後在太平洋紫杉醇療法療程期間及視情況在隨後6個月中監測個體；不論何時藉由疼痛品質評估量表測定太平洋紫杉醇相關疼痛有所增強，重複投與PDACTM。 病例2 78歲糖尿病個體表現為主要在腿中經受之糖尿病性神經病變，且顯然涉及坐骨神經，從而使得行走困難。在個體坐下時及在個體行走時使用數字型疼痛評估量表評估個體之疼痛。在疼痛評估後，藉由靜脈內輸注向個體投與存於生理鹽水中之1×109 CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)。在隨後之7天中監測個體之任何不良事件，且在投與後第7天同樣在個體坐下時及在個體行走時再次評估疼痛。若在坐下時，在行走時，或在兩種情況下疼痛之個別指標降低，則認為投與成功。視情況，若在坐下時，在行走時，或在兩種情況下個體指標有所改善，則可向個體投與與第一劑量相等之第二劑量之PDACTM。然後在隨後之6個月中每1-2週監測個體，且無論何時根據數字型疼痛評估量表測定疼痛有所惡化，皆進行跟蹤投與。 病例3 62歲個體表現為帶狀疱疹後神經痛。個體之醫療記錄確認，在個體之右背側區域上先前曾患有帶狀疱疹且伴隨皮疹及疱疹性膿皰。然而，在皮疹及膿皰癒合後一個月後，與帶狀疱疹有關之疼痛仍未消退。使用數字型疼痛評估量表來評估個體之疼痛。在疼痛評估後，藉由靜脈內輸注向個體投與存於生理鹽水中之1×109 CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)。在隨後之7天中監測個體之任何不良事件，且在投與後第7天再次評估疼痛。 病例4 個體表現為與先前損傷相關之四肢神經病性疼痛。主治外科醫師指示，麻醉劑及NSAID無法治療該病況。使用疼痛品質評估量表來實施疼痛評估，且在0-10量表上指示所指示每一疼痛類型之疼痛品質。亦記錄累計分數。在疼痛評估後，藉由靜脈內輸注向個體投與存於生理鹽水中之1×109 CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)。在隨後之7天中監測個體之任何不良事件，且在投與後第7天再次評估疼痛。比較每一個別疼痛品質之分數及總累計疼痛分數與投與之前之分數。若大部分疼痛品質分數或累計分數在投與後未降低，則視情況藉由靜脈內輸注向個體第二次投與存於生理鹽水中之1×109 PDACTM。然後在太平洋紫杉醇療法療程期間及視情況在隨後6個月中監測個體；不論何時藉由疼痛品質評估量表測定太平洋紫杉醇相關疼痛有所增強，重複投與PDACTM。 6.3.2 局部投與 62歲個體表現為帶狀疱疹後神經痛。個體之醫療記錄確認，其先前曾患有帶狀疱疹且伴隨皮疹及疱疹性膿皰。然而，在皮疹及膿皰癒合後一個月後，與帶狀疱疹有關之疼痛仍未消退。使用數字型疼痛評估量表來評估個體之疼痛。在疼痛評估後，以一系列10次之毗鄰神經幹之注射向個體投與存於富血小板血漿溶液中之3×107 CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)，以作用於個體受帶狀疱疹影響之區域。在隨後之7天中監測個體之任何不良事件，且在投與後第7天再次評估疼痛。 6.4 實例4：使用PDAC TM治療外陰痛 41歲女性個體表現為外陰痛。在治療之前，用棉籤及輕柔指觸診來確定確切疼痛部位。使用數字型疼痛評估量表來評估個體之疼痛。在疼痛評估後，經由陰道內投與疼痛部位給予個體存於富血小板血漿溶液中之1×109 CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)。在隨後之7天中監測個體之任何不良事件，且在投與後第7天再次評估疼痛。 6.5 實例5：使用PDAC TM治療間質性膀胱炎 29歲女性個體診斷患有間質性膀胱炎。使用數字型疼痛評估量表來評估個體之疼痛。在疼痛評估後，經由膀胱內途徑在膀胱頸任一側及個體在檢查期間已確定為壓痛之其他骨盆部位給予個體存於富血小板血漿溶液中之1×109 CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)。在隨後之7天中監測個體之任何不良事件，且在投與後第7天再次評估疼痛。亦在投與後第7天藉由尿分析及間質性膀胱炎之生物標記物評估個體。 6.6 實例6：使用PDAC TM在大鼠中減弱基於神經周發炎之疼痛 此實例闡述使用大鼠神經炎模型評估CD34-、CD10+、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PDACTM)對神經病性疼痛之效應及評估可能介導細胞效應之潛在離體變化之研究。神經炎模型係由神經周發炎引起之神經病性疼痛之已確立模型。在此模型中，在大鼠坐骨神經附近誘導神經周發炎。在2-3天內在神經靶器官(後爪)中出現疼痛且在約8天內消退。實驗程序 使用三個月齡雄性Sprague Dawley大鼠，其最初重約250-300 g。在研究中包括四組：0.4×106、1×106或4×106劑量之PDACTM及媒劑對照。大鼠之最小及最大重量在±20%範圍內。 在手術麻醉(50 mg/kg克他明及7.5 mg/kg甲苯噻嗪，IM注射)下，在大腿中部暴露大鼠之總坐骨神經(common sciatic nerve)且用經200 μl 1% λ卡拉膠(Sigma-Aldrich CAS編號：9064-57-7)浸泡之無菌生物相容性載體包裹。在手術後3天，評估動物之機械超敏性作為後爪疼痛之間接量度。觸覺異常性疼痛係藉由評估對有刻度Von Frey纖維之縮回反應來量測。在此研究中，根據所施加力採用三種纖維，即低(8 g)、中(16 g)及高力纖維(26 g)。將每一纖維在兩個後爪之蹠面上施用5次並計算反應百分比。 在誘導神經周發炎後第4天，在評估異常性疼痛後立即用0.4×106、1×106或4×106劑量之PDACTM或媒劑治療動物。治療係經由尾靜脈經靜脈內提供。在治療後之不同時間點，藉由施用與手術後第3天相同之程序來評估動物之機械異常性疼痛。在第0、3、4、6及8天評估疼痛等級。分析包括坐骨神經、引流淋巴結及血漿在內之組織樣品。結果 結果顯示，在第4、6及8天，4×106及1×106劑量之PDACTM與媒劑組相比顯著降低疼痛，而0.4×106劑量之PDACTM在第4天顯示降低疼痛之傾向。離體組織分析顯示，PDACTM在引流淋巴結中藉由抑制抗原呈遞細胞(包括樹突細胞及巨噬細胞)之活化而抑制T細胞初敏及活化。PDACTM在引流淋巴結以及同側坐骨神經中減少干擾素γ、IL-17，同時增加IL-10之產生，從而表明PDACTM調節T細胞分化。此外，在同側坐骨神經中，在PDACTM治療動物中觀察到顯著較低之白血球浸潤。 6.7 實例7：胎盤幹細胞之產生此實例顯示胎盤幹細胞之分離 概述：解剖並消化胎盤組織，之後進行初代及擴增培養以獲得產生多個細胞劑量之擴增細胞產物。將細胞儲存在雙層式細胞庫中且分配為冷凍細胞產物。所有衍生自單一供體胎盤之細胞劑量皆定義為一批次，且在專用室及100級層流罩中使用無菌技術一次處理一個胎盤批次。將細胞產物定義為CD105+、CD200+、CD10+及CD34-，其具有正常核型且不具有或實質上不具有母體細胞內容物。 6.7.1 獲得幹細胞 組織解剖及消化：在娩出後24小時內獲得胎盤。自羊膜、羊膜與絨毛膜之組合或絨毛膜獲得胎盤組織。將組織切碎為約1 mm大小之小塊。將切碎之組織在37℃下在1 mg/ml膠原酶1A中消化1小時，之後在37℃下在胰蛋白酶-EDTA中消化30分鐘。在存於PBS中之5% FBS中洗滌三次後，使組織再懸浮於培養基中。 初代培養：使經消化組織懸浮於培養基中並將其置於Corning T燒瓶中，將其在維持在37℃及5% CO2下之加濕室中培育。在培養5天後補充一半培養基。截至培養2週時形成高密度細胞群落。用胰蛋白酶-EDTA收穫群落，然後用存於PBS中之2% FBS驟冷。將細胞離心並再懸浮於培養基中以供接種擴增培養。該等細胞定義為倍增0次之0代細胞。 擴增培養：使用自初代培養收穫之細胞、自擴增培養收穫之細胞或自細胞庫解凍之細胞來接種擴增培養。將細胞工廠(Cell Factories，NUNCTM)經由無菌過濾器用存於空氣中之5% CO2以50 ml/min/托盤處理10 min，且在維持在37℃及5% CO2下之加濕培育器中升溫。在血球計上用台盼藍計數細胞種，且記錄細胞數目、存活率、傳代次數及累積倍增次數。使細胞懸浮於培養基中至約2.3×104細胞/ml且以110 ml/托盤接種於細胞工廠中。在培養3-4天後以及在培養5-6天時，移除培養基且用新鮮培養基替代，之後再次用存於空氣中之5% CO2處理。在細胞達到約105細胞/cm2時，用胰蛋白酶-EDTA收穫細胞，之後用存於PBS中之2% FBS驟冷。然後將細胞離心並再懸浮於培養基中。 冷凍保藏：用胰蛋白酶-EDTA自培養物收穫欲冷凍之細胞，用存於PBS中之2% FBS驟冷，且在血球計上計數。在離心後，用10% DMSO使細胞再懸浮於FBS中至約1×106細胞/ml(對於欲用於組成細胞庫之細胞)及1×107細胞/ml(對於個別冷凍細胞劑量)之濃度。將細胞溶液轉移至冷凍容器中，將其置於-80℃冷凍器中之異丙醇浴中。第二天，將細胞轉移至液氮中。 6.8 實例8：胎盤幹細胞特異性基因之鑑別 比較如實例7中自羊膜-絨毛膜(AC)及臍帶(UC)製備之胎盤幹細胞之基因表現模式與多潛能性骨髓衍生之間質幹細胞(BM)及真皮纖維母細胞(DF)之基因表現模式，後者視為終末分化。使細胞生長經單次傳代、中等次數之傳代及多次傳代(包括直至老化)。結果表明，群倍增次數對基因表現具有重要影響。鑑別一組基因，其在AC及UC中上調，且在BM及DF中下調或不存在，且其表現與傳代次數無關。在此實例中，下文將胎盤幹細胞及臍帶幹細胞統稱為AC/UC幹細胞。 6.8.1 方法及材料6.8.1.1 細胞及細胞培養 BM(目錄編號PT-2501)及DF(目錄編號CC-2511)購自Cambrex。AC及UC源自0代組織培養燒瓶。燒瓶中之AC及UC係藉由消化供體胎盤來獲得。以6000細胞/cm2接種T-75培養燒瓶且在細胞全滿時進行傳代。根據台盼藍細胞計數估計群倍增。在3、11-14及24-38次群倍增後分析培養物之基因表現。 6.8.1.2 RNA、微陣列及分析 直接在細胞之組織培養燒瓶中溶解細胞，但一個在溶解前經胰蛋白酶消化之培養物除外。來自QIAGEN之用RNeasy套組分離總RNA。用Agilent 2100生物分析儀測定RNA完整性及濃度。在Affymetrix GENECHIP®平臺上使10微克來自每一培養物之總RNA雜交。根據製造商之方法將總RNA轉化為經標記cRNA且與寡核苷酸人類基因組U133A 2.0陣列雜交。用Affymetrix MAS 5.0軟體處理影像文件，且用Agilent GeneSpring 7.3軟體進行正規化及分析。 6.8.2 結果6.8.2.1 用於微陣列分析之BM-MSC、AC/UC幹細胞及DF培養時間點之選擇 為建立AC/UC幹細胞特有之基因表現模式，將兩個幹細胞系AC(6)及UC(6)與BM-MSC及DF平行培養。為使根據細胞來源鑑別基因表現譜最佳化且使外部影響最小化，所有細胞皆在相同培養基中生長，接種，並使用相同標準進行傳代培養。在3次群倍增、11-14次倍增或35次倍增或老化(以先發生者為準)後，收穫細胞。在AC/UC幹細胞中之表現不隨培養時間而改變且相對於BM及DF有所上調之基因係AC/UC幹細胞特異性基因之候選者。 在3次群倍增後收集並收穫樣品(BM、AC(6)及UC(6))；該等樣品視為經「短」時間培養。不收集短期DF樣品。收集所有細胞類型之中等長度培養物(11至14次倍增)。在約35次群倍增時或在即將老化前(以先發生者為準)自所有細胞系收集長期培養物。老化發生在15次倍增(BM)及25次倍增(DF)之前。所購買BM及DF細胞在基因分析前多次擴增，且不可視為處於早期。然而，在操作上，生長經三次倍增之BM(BM-03)被認為係短期培養物。同樣，BM-11在操作上稱作中等長度培養物，但由於在14次倍增時發生老化，BM-11很可能在生物學上係長期培養物。 6.8.2.2 階層式分群法顯示BM、AC/UC幹細胞與DF之間之關係 微陣列分析鑑別基因表現模式，且階層式分群法(HC)試圖在兩個維度之背景中尋找相似性，即，在第一維度中尋找基因之相似性且在第二維度中尋找不同條件(不同RNA樣品)之相似性。用於此實驗中之GeneChip含有超過22,000個探針組(稱作「全基因表列(all genes list)」)，但該等組中有很多詢問不在任何條件下表現之基因。為減小全基因表列，消除在所有樣品中皆不表現或表現程度低(原始值低於250)之基因，從而獲得有8,215個基因之表列。 6.8.2.3 用於鑑別AC/UC幹細胞特異性基因之過濾方法 在所有AC/UC樣品中保持恆定且在BM及DF中下調之基因可視為具有AC/UC幹細胞特異性。組合兩種過濾方法來產生58個AC/UC幹細胞特異性基因之列表(表2)。 首先，藉由選擇彼等在八種AC/UC幹細胞條件之至少七者中相對於所有BM及DF樣品過表現三倍者來鑑別58個基因。基於八種AC/UC幹細胞條件中之八者過濾產生類似列表。第二種過濾方法使用由Affymetrix MAS 5.0軟體提供之「不存在」及「存在」呼叫(call)。藉由鑑別在所有BM及DF條件下不存在且在AC-03、AC-11、UC-03及UC-11中存在之基因來創建列表。對在隨後之AC/UC幹細胞條件中之基因呼叫未作規定。 兩個列表顯著重疊且將其合併。藉由消除以下各項進一步修整合併列表：(1)若干個在大部分或所有AC/UC幹細胞條件下以極低程度表現之基因，及(2)載於Y染色體上之基因。藉由FISH分析確認用於此研究中之AC及UC細胞為雄性，且BM及DF衍生自雌性供體。所得具有46個AC/UC幹細胞特異性基因之列表展示於表3中。 此46個基因之列表編碼呈現多個本體論組之蛋白質的集合。最具有代表性之組細胞黏附含有8個基因。沒有基因編碼參與DNA複製或細胞分裂之蛋白質。亦列示16個特定涉及上皮之基因。 6.8.3 論述 鑑別可與骨髓衍生之間葉細胞區分之胎盤幹細胞特異性表現模式。在操作上，此模式包括46個在所有胎盤幹細胞樣品中相對於所有BM及DF樣品過表現之基因。 實驗設計比較在培養中短時間、中等時間及長時間培養之細胞。對於AC及UC細胞，每一培養時間具有差別表現基因之特徵組。在短期或早期(AC-03及UC-03)期間，200個上調基因在8次群倍增後回歸平均值。 中等長度培養物之基因表現可界定為快速細胞分裂，且在此時差別表現之基因與彼等在早期期間差別表現者顯著不同。許多在AC-11及UC-11以及BM-03及DF-14中上調之基因參與染色體複製及細胞分裂。基於基因表現，BM-03在生物學上表現為中期培養。在此中期中，細胞增殖會掩蓋細胞類型特異性基因表現。另外，幾乎每一在短期AC或UC培養物中過表現之基因在中期及後期條件下皆出現下調。在此高增殖性階段期間，143個基因上調五倍，佔所表現基因之約1.7%。 長期培養物代表終期或老化期。在此階段中，細胞已耗盡其分裂能力，且尤其對於AC及UC，差別表現基因之絕對數目顯著減少。此可能係由於細胞完全適應了其培養環境且生物合成的壓力因此降低。令人驚訝地，晚期BM及DF培養物不顯示此相同行為；大量基因在BM-11及DF-24中相對於AC及UC差別表現且正規化值為1。在長期培養物中AC及UC可與BM及DF最顯著區分。 本文所述胎盤幹細胞特異性基因列表可變。COL4A1及COL4A2協同調節，且KRT18及KRT8亦表現為共表現。八個基因編碼參與細胞-細胞接觸之蛋白質，該等基因中之三者(DSC3、DSG2及PKP2)定位至橋粒(即錨定至中等細絲細胞骨架蛋白(例如角蛋白18及角蛋白8)之細胞間接觸點)。緊密細胞-細胞接觸係上皮細胞及內皮細胞之特徵且通常與纖維母細胞無關。表3列示總計46個基因中16個上皮細胞特徵性基因。胎盤幹細胞一般闡述為纖維母細胞樣小紡錘形細胞。此形態通常與BM及DF不同，尤其係在較低細胞密度下。亦應注意CD200之表現模式，其存於AC/UC幹細胞中且在所有BM及DF樣品中不存在。 此46個基因之基因亞組構成一組區分AC/UC幹細胞與骨髓衍生之間質幹細胞或纖維母細胞之分子生物標記物。 6.9 實例9：使用胎盤幹細胞減弱大鼠中與神經周發炎有關之異常性疼痛及神經發炎反應 此實例顯示，胎盤幹細胞經由可能包含以下之機制降低神經發炎性疼痛：抑制樹突細胞歸巢、活化及分化；誘導IL-10；及T細胞調節。 6.9.1 材料及方法6.9.1.1 動物及手術程序 使用在研究起始時約250-300 g之3個月齡雄性Sprague Dawley大鼠；組中之最小及最大重量在組平均重量之±20%範圍內。 對於手術程序，用腹膜內投與之克他明(50 mg/kg)及甲苯噻嗪(7.5 mg/kg)溶液麻醉大鼠。在確認麻醉後，將手術區域剃毛且隨後用必達淨(betadine)及酒精擦拭。如先前所述進行手術(參見Herzberg等人，Pain,1999,83：169-82)。簡言之，藉由穿過股二頭肌鈍器解剖且與毗鄰組織輕柔分離而在大腿中部區位暴露總坐骨神經。將神經包裹在無菌止血藥氧化纖維素之帶(寬約3 mm且長25 mm，SURGICELTM「棉」型；Ethicon,J&J,NJ,USA)中。SURGICELTM係藉由將彎鉗伸至神經下方(特別小心以避免拉伸神經)，抓住帶之一端且將其拉至神經下。然後將所抓住端輕柔包在神經上，且以反方向包覆另一端。將SURGICELTM鬆散包裹在神經周圍以不引起任何神經縮窄。在施加前，將0.2 cc之1%卡拉膠注射至SURGICELTM帶中以誘導局部發炎反應。在第3天治療前，將大鼠隨機分配至每一治療組。 6.9.1.2 觸覺異常性疼痛評估 觸覺異常性疼痛係藉由評估對有刻度Von Frey纖維之縮回反應來量測。在此研究中根據所施加力採用三種纖維，即低(8 g)、中(16 g)及高力纖維(26 g)。將每一纖維向爪施用5次且根據先前所述計算反應之百分比分數(參見Flatters 人，Pain,2004,109：150-61)。 6.9.1.3 胎盤幹細胞製備及投與 CD34-、CD10+、CD200+及CD105+胎盤幹細胞係如實例7中所述來製備。 在第3天，在使左坐骨神經暴露於神經周發炎後，使冷凍保藏之胎盤幹細胞在37℃水浴中解凍。藉由台盼藍測定細胞存活率，且平均存活率為約95%。然後在50 ml錐形管中用勃脈力(Plasmalyte)(Baxter Healthcare公司)將細胞稀釋至4×106、1×106或4×105細胞/ml。隨後將細胞抽入具有26G針之1 ml注射器中。在解凍後2小時內，經由尾靜脈投與1 ml胎盤幹細胞或媒劑。在第0、3、4、6及8天評估疼痛等級。 6.9.1.4 動物組織 在治療後一天(第4天)，收集腹股溝淋巴結且將其快速冷凍以供分離RNA。在第8天收穫坐骨神經。對於基因表現分析，將坐骨神經快速冷凍以供分離RNA。對於流式細胞術分析，將坐骨神經置於濕冰上之D-PBS中。經由心臟穿刺將血液抽入EDTA收集管中。立即將血樣以1300 RCF離心10分鐘。然後收集血漿並快速冷凍。 6.9.1.5 RNA提取及定量PCR 對冷凍之大鼠坐骨神經及引流淋巴結進行稱重，且使用來自Qiagen之TissueRuptor在每重量適當體積之溶解緩衝液中勻漿化。根據製造商之方案使用Qiagen's Rneasy脂質組織套組自勻漿化大鼠坐骨神經及引流淋巴結中提取總RNA。藉由NanoDrop ND-1000(Thermo Fisher Scientific)測定總RNA濃度。使用來自Invitrogen之SuperScript III自分離之RNA合成cDNA。對於基因表現，使用用於大鼠之個別TaqMan基因表現分析來分析CD11c、CD86、CD80、CD3d、CD69、IL-12、IFN-γ、IL-10及IL-17。使用GAPDH表現使相對基因表現正規化且使用2-△△Ct方法來計算倍數變化。 6.9.1.6 細胞介素量測 血漿細胞介素量測係使用來自Invitrogen之大鼠細胞介素10-plex套組來實施，其檢查GM-CSF、IFN-γ、IL-1α、IL-1β、IL-2、IL-4、IL-6、IL-10、IL-12及TNF-α。根據製造商之方案運行血漿樣品。簡言之，將抗體偶聯珠粒添加至所提供之真空過濾板中。隨後用工作洗滌溶液洗滌珠粒。將標準品或動物樣品添加至每一孔中且將板在室溫下在避光定軌振盪器上培育2小時。將各孔洗滌兩次且添加生物素化檢測抗體。在室溫下培育1小時並洗滌後，將R-藻紅素偶聯之抗生蛋白鏈菌素添加至板中並保持30分鐘。將板洗滌3次且在Luminex 100上使用STarStaion 2.3軟體實施數據採集。對於IL-17 ELISA，對坐骨神經稱重且將其置於300.25 μl含有以下之培養基中：300 μl Cellytic-MT哺乳動物組織溶解/提取試劑(Sigma Chemical公司)及0.25 μl蛋白酶抑制劑混合劑(Sigma Chemicl公司)。然後將樣品勻漿化並離心(12,500×g，10 min)。收集上清液且藉由ELISA(R&D Systems公司)測定IL-17含量。 6.9.1.7 坐骨神經單細胞懸浮液及流式細胞術 獲得新鮮坐骨神經樣品且將其置於濕冰上之D-PBS中。使用木瓜蛋白酶神經解離套組及來自Miltenyi Biotech之gentleMACS勻漿器將神經解離為單細胞懸浮液。簡言之，將單一坐骨神經置於具有1950 μl 37℃預加熱酶混合物1之C-管(Miltenyi Biotech)中。將C-管置於gentleMACS上且運行「m-brain-01」程式。將管置於旋轉器上且在37℃下培育15分鐘。在gentleMACS程式「m_brain_02」上運行坐骨神經。隨後，添加30 μl酶混合物2。將神經在溫和旋轉及37℃下培育10分鐘。在gentleMACS「m_brain_03」上運行神經樣品，且隨後在37℃下培育10分鐘。使所得懸浮液通過40 μ細胞濾器。使細胞以300×g沈澱且再懸浮於FACS緩衝液(PBS-1% FBS)中。使用0.5 μg FITC小鼠抗大鼠CD3(BD Biosciences)及0.5 μg PE-小鼠抗大鼠巨噬細胞亞組(ED2樣抗原，BD Biosciences)對單細胞懸浮液進行染色。使用匹配之同種型對照來設置閘控。 6.9.1.8 免疫組織化學 遵循免疫組織化學及免疫螢光法之標準方案實施免疫染色。在誘導神經炎後8天收穫雙側坐骨神經。簡言之，根據所述將坐骨神經固定在HOPE緩衝液中(參見Olert J、Wiedorn KH、Goldmann T、Kuhl H、Mehraein Y、Scherthan H)。 遵循免疫組織化學及免疫螢光法之標準方案實施免疫染色。在誘導神經炎後8天收穫雙側坐骨神經。簡言之，根據所述將坐骨神經固定在HOPE緩衝液中(參見Olert等人，Pathol Res Pract,2001,197：823-6)。將組織切片(5微米)於封阻溶液(PBS，含有1×酪蛋白、0.3% Triton X-100及5%馬血清)中封阻30分鐘。然後將切片與以下一級抗體中之一者或兩者一起培育過夜：CD68(純系ED1，小鼠單株IgG1，Santa Cruz Biotechnology)、CD4(山羊多株IgG，Santa Cruz Biotechnology)及CD8(小鼠單株IgG2a，Santa Cruz Biotechnology)。在PBS中洗滌三次後，將載玻片在室溫下於以下適宜二級抗體中培育30 min：與Alexa Fluor 488偶聯之山羊抗小鼠IgG2a(500：1,Invitrogen)、與Alexa Fluor 488偶聯之山羊抗小鼠IgG1(500：1,Invitrogen)、與Alexa Fluor 488偶聯之驢抗山羊(500：1,Invitrogen)。對於核染色，在最後一次PBS洗滌後施用600 nM DAPI溶液(Sigma)並保持10分鐘。在PBS中洗滌後，將載玻片安置在螢光用水性介質(Vector)中。用配備有高解析度數位相機Nikon DXM1200F且與配備有用於影像擷取及歸檔之NIS Elements軟體之PC連接之NIKON Eclipse E800型顯微鏡來擷取免疫組織化學影像。 6.9.1.9 數據分析 數據表示為平均值±SEM。使用StatView軟體5.0版(SAS Institute公司，San Francisco,California,USA)將數據製表並分析。將所有分析中用於顯著性之α(雙尾)設置為0.05。依次用重複量測變異數分析(ANOVA)及事後測試來分析行為數據。對於離體分析，使用2尾司徒登氏t測試來鑑別媒劑與細胞治療組之間之差異。 6.9.2 結果6.9.2.1 胎盤幹細胞緩和機械異常性疼痛 使用三個不同有刻度單絲(包括8 g、16 g及26 g)來測試機械異常性疼痛。在治療前第3天，對16 g及26 g刺激之反應恆定且可重複，而大鼠之分數對8 g刺激無反應。因此，僅使用自對16 g及26 g刺激之反應收集之數據來進行數據分析。如所預期，與在誘導神經炎之前第0天相比，在手術程序(procedure)後第3天，對刺激之反應(異常性疼痛)出現顯著增強。在治療前之該階段未觀察到媒劑組與胎盤幹細胞治療組之間有顯著差異。在26 g刺激下，媒劑對機械敏感性無效應，而4×106胎盤幹細胞將後爪縮回自第3天之93.3%±2.98分別顯著降低至第6天及第8天之46.7%±6.80及36.7%±5.37(圖3A)。在16 g刺激下觀察到胎盤幹細胞具有類似之降低疼痛的傾向，其中後爪縮回自57.8±10.24%分別降低至第6天及第8天之22.2±7.03%及26.7±3.33%。未觀察到對對側爪有顯著效應(圖3B)。 進一步檢查胎盤幹細胞對神經炎誘導之機械異常性疼痛降低之劑量效應。在第4、6及8天，4×106及1×106胎盤幹細胞與媒劑組相比顯著降低機械異常性疼痛，而4×105胎盤幹細胞僅在第4天顯示降低疼痛之傾向(圖3C)。對胎盤幹細胞治療有反應之動物之百分比亦顯示劑量依賴性(圖3D)。 6.9.2.2 胎盤幹細胞抑制樹突細胞募集、活化及分化 為闡明胎盤幹細胞介導之抗神經發炎機制，檢查引流淋巴結中之樹突細胞。如圖4A中所示，胎盤幹細胞治療組降低CD11c之表現。同時，樹突細胞活化標記物、CD86及CD80受胎盤幹細胞抑制。與對CD11c、CD86及CD80之抑制一致，在引流淋巴結中，胎盤幹細胞亦顯著降低IL-12(分化樹突細胞分泌之關鍵促炎性細胞介素)之表現(圖4B)。 6.9.2.3 胎盤幹細胞抑制T細胞初敏且調節T細胞分化 慮及胎盤幹細胞可降低樹突細胞歸巢及活化之能力，預期隨後可影響樹突細胞之T細胞初敏。實際上，T細胞受體CD3及T細胞活化標記物CD69之表現在胎盤幹細胞治療組中皆顯著低於對照組(圖5A)，表明T細胞增殖及活化在引流淋巴結中受胎盤幹細胞抑制。 此外，檢查T-輔助細胞亞群以測試胎盤幹細胞是否對T細胞分化有效應。如圖5B及5C中所示，胎盤幹細胞在引流淋巴結中顯著抑制干擾素γ(IFNγ)，表明胎盤幹細胞抑制Th-1 T細胞分化。另外，胎盤幹細胞使IL-17在引流淋巴結(圖5C)以及同側坐骨神經(圖6A及6B)中之表現下調。另一方面，觀察到在引流淋巴結(圖6C)以及血漿(表4)中，胎盤幹細胞使抗炎細胞介素IL-10上調。在血漿中測試之9種促炎性細胞介素中，胎盤幹細胞使4種促炎性細胞介素(包括IFNγ、IL-2、IL-6及IL-12)下調，同時未觀察到IL-1β在胎盤幹細胞組與媒劑組之間有差異(表4)。其他細胞介素(包括GM-CSF、IL-1α、IL-4及TNF-α)低於血漿中之檢測值。 6.9.2.4 胎盤幹細胞在同側坐骨神經中抑制免疫細胞浸潤 隨後，檢查至同側坐骨神經中之白血球浸潤。巨噬細胞標記物Emr1及CD68在胎盤幹細胞治療組中下調，表明巨噬細胞募集及活化降低(圖7A)。樹突細胞浸潤及活化亦受胎盤幹細胞抑制，如藉由CD11c、CD80及IL-12表現下調來證明(圖7B)。此外，T細胞浸潤及活化亦受胎盤幹細胞抑制，如胎盤幹細胞治療組中CD3及CD69之表現降低所顯示(圖7C)。與上述基因表現結果一致，對來自同側坐骨神經之單細胞懸浮液之流式細胞術分析顯示，在胎盤幹細胞治療組中僅檢測到1.5% CD3+細胞及3.9% ED2+細胞，與之相比，在媒劑組中檢測到13.3% CD3+及8.0% ED2細胞(圖7D)。H&E染色揭示，與正常動物及胎盤幹細胞治療動物相比，在媒劑組中有若干處神經弓水腫(epineural edema)及發炎性浸潤(圖8A-C)。與媒劑組相比，CD68(圖8D-F)、CD8(圖8G-I)及CD4(圖8J-L)之表現在胎盤幹細胞治療組中皆減弱。 此外，趨化素(包括Ccl2、Ccl12及Cxcl1)在同側坐骨神經(圖9)中受胎盤幹細胞抑制。 6.9.2.5 結論 總之，此實例顯示，胎盤幹細胞降低神經周發炎誘導之機械異常性疼痛。此外，在引流淋巴結中，胎盤幹細胞藉由抑制樹突細胞歸巢至引流淋巴結且藉由減弱樹突細胞活化來抑制T細胞初敏，且調節T細胞分化。 6.10 實例10：使用胎盤幹細胞減弱大鼠中與神經周發炎有關之異常性疼痛及神經發炎反應 此實例顯示，胎盤幹細胞可降低神經病性疼痛。 6.10.1 材料及方法6.10.1.1 動物及手術程序 研究中包括77隻在研究起始時約200-250 g之3個月齡雄性Sprague Dawley大鼠。組中之最小及最大重量在組平均重量之±20%範圍內。在若干天之習慣化後，對大鼠進行疼痛行為(觸覺異常性疼痛)之基線量測及運動感覺評估(旋轉棒測試)。所有大鼠皆經歷坐骨神經慢性縮窄損傷(CCI)；在手術後第6天確認疼痛出現，且在第7天確認感覺運動行為。在手術程序後第8天，將大鼠隨機分配至多個治療組中(表5)。在手術程序後第6天、第10天、第16天、第25天及第30天評估疼痛等級。在第11天、第21天、第26天及第34天評估運動感覺協調性。在第35天，將大鼠無痛致死，收集坐骨神經(兩側)且包埋於石蠟中。對脾及淋巴結進行快速冷凍且收集最大量之血液處理為血漿。 對於手術程序，用IP投與之克他明(50 mg/kg)及甲苯噻嗪(7.5 mg/kg)溶液麻醉大鼠。在確認麻醉後，將手術區域剃毛且隨後用必達淨及酒精擦劑消毒。潤滑大鼠眼睛。 6.10.1.2 胎盤幹細胞 CD34-、CD10+、CD200+及CD105+胎盤幹細胞係如實例7中所述來製備。 6.10.1.3 慢性縮窄損傷 如先前所述實施手術(參見Bennett及Xie,Pain,1988,33：87-107)。簡言之，藉由穿過股二頭肌鈍器解剖且與毗鄰組織輕柔分離而在大腿中部區位暴露總坐骨神經。在坐骨三叉分枝之近端，將神經與黏附組織輕柔分開約7 mm，且圍繞神經鬆散綁縛3個結紮(4/0鉻腸線)，其彼此間隔1.0-1.5 mm。結紮之綁縛應使神經幾乎不縮窄，且不阻礙通過淺表神經弓脈管系統之循環。使用用於肌肉之3/0 Vicryl縫線及用於皮膚之傷口夾分層閉合切口。 6.10.1.4 行為測試 使用觸覺異常性疼痛測試來評估疼痛等級。在此測試中，量測對有刻度Von Frey纖維之縮回反應。在此研究中，根據所施加力採用三種纖維，即低(8 g)、中(16 g)及高力纖維(26 g)。將每一纖維向爪施用5次且計算反應之百分比分數(參見Flatters等人，Pain,2004,109：150-161)。在基線水準處，最可靠且可重複之分數係對26 g之反應；因此基於26 g數據實施統計分析。 用旋轉棒測試評估運動感覺協調性。在此測試中，將齧齒動物置於旋轉棒上且逐漸增加旋轉速度。記錄齧齒動物保持在旋轉棒上之能力(時間，秒)。所用速度係4-40 rpm(最大180 sec)，且下降高度小於30 cm。旋轉棒測試之目的係評估齧齒動物之運動感覺協調性。該測試對影響運動功能之藥物靈敏且有助於評估藥劑之鎮靜效應。 6.10.1.5 加巴噴丁 在磷酸鹽緩衝鹽水(PBS)中製備加巴噴丁。所用劑量係100 mg/ml且將0.25 ml腹膜內(IP)注射至250 g大鼠中。將相同體積之PBS IP注射至對照組中。 6.10.1.6 數據分析 使用StatView軟體5.0版(SAS Institute公司，San Francisco,California,USA)將數據製表並分析。將所有分析中用於顯著性之α(雙尾)設置為0.05。僅計算在所有時間點皆有數據之大鼠的行為統計學。依次使用重複量測變異數分析(ANOVA)及事後測試來獲得疼痛及運動感覺協調性分數。藉由與基線值比較來確認疼痛出現。在手術程序後第6天藉由與疼痛等級比較來獲得對疼痛之效應。 6.10.2 結果6.10.2.1 疼痛行為--觸覺異常性疼痛 如圖10中所示，在手術程序後6天，所有組中皆顯示反應(指示疼痛)顯著增強。 肌內(IM)投與4×104胎盤幹細胞在研究持續時間內在第10、16、25及30天顯著降低疼痛(圖10C)。靜脈內(IV)投與胎盤幹細胞顯著降低疼痛。具體而言，IV投與4×106胎盤幹細胞在第16、25及30天顯著降低疼痛；且IV投與1×106胎盤幹細胞在第16天顯示顯著降低疼痛之效應(圖10A)。如所預期，全身性投與加巴噴丁在第10、16、25及30天顯著降低疼痛(圖10A、10C)。 6.10.2.2 運動感覺協調性-旋轉棒測試 如圖11中所示，加巴噴丁治療對照組顯示在旋轉棒上耗費之時間顯著縮短(運動感覺協調性改變)，而胎盤幹細胞治療組之載具運動感覺協調性(與媒劑治療組類似)在IV(圖11A)或IM(圖11B)投與後不受影響。 6.10.2.3 結論 IV或IM投與胎盤幹細胞降低由坐骨神經慢性縮窄損傷誘導之神經病性疼痛。胎盤幹細胞對疼痛降低之效應與加巴噴丁類似。然而，加巴噴丁誘導顯著運動感覺協調性缺陷，而胎盤幹細胞不會如此。 等效內容： 本文所揭示組合物及方法之範圍並不受限於本文所述具體實施例。實際上，除彼等所述修改外，熟習此項技術者可根據上述說明及附圖瞭解該等組合物及方法之各種修改。該等修改意欲屬於隨附申請專利範圍之範疇。 本文引用各種出版物、專利及專利申請案，其揭示內容係全文以引用方式併入。 圖1繪示CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞、媒劑或加巴噴丁(gabapentin，GBP)在神經病性疼痛模型中減輕疼痛之效能。X軸：條件；Y軸：根據Von Frey細絲分選分析之敏感性改善(異常性疼痛)。「D」：天。GBP：加巴噴丁。MPK：毫克/公斤。BL：基線。 圖2繪示在神經病性疼痛動物模型中藉由投與CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(1×106、3×106或10×106細胞/投與)、媒劑或加巴噴丁(GBP)產生之總疼痛緩解(TOPAR)程度。星號指示與僅投與媒劑相比顯著之結果。 圖3A-3D繪示藉由Von Frey纖維之26 g力量測之CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞對機械異常性疼痛之效應。(A)：同側肢在投與4×106胎盤幹細胞(正方形)及媒劑(菱形)後之後爪縮回頻率。(B)：對側肢在投與4×106胎盤幹細胞(正方形)及媒劑(直線)後之後爪縮回頻率。(C)：胎盤幹細胞在同側肢對降低機械異常性疼痛之劑量依賴性效應。(D)：胎盤幹細胞對疼痛降低反應者百分比之劑量依賴性效應。*P<0.05；**p<0.01，相對於媒劑。對於圖3C及3D，第一柱(最左側)代表媒劑；第二柱代表4×106胎盤幹細胞；第三柱代表1×106胎盤幹細胞；且第四柱(最右側)代表4×105胎盤幹細胞。 圖4A-4B顯示，在第4天，在引流淋巴結處，CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞抑制樹突細胞募集、活化及分化。(A)：胎盤幹細胞治療組具有較低CD11c、CD86及CD80基因表現。(B)：胎盤幹細胞治療組具有較低IL-12基因表現。*P<0.05；**p<0.01，相對於媒劑。對於圖4A及4B，第一柱(最左側)代表媒劑；第二柱(最右側)代表胎盤幹細胞。 圖5A-5C顯示，CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞抑制T細胞活化，調節T細胞分化及細胞介素譜。(A)：在引流淋巴結處在第4天，胎盤幹細胞治療組具有較低CD3及CD69基因表現。(B)在引流淋巴結處在第4天，胎盤幹細胞治療組具有顯著較低之IFNγ基因表現。(C)：在引流淋巴結處在第4天，胎盤幹細胞治療組具有較高IL-10及較低IL-17基因表現。*P<0.05；**p<0.01，相對於媒劑。對於圖5A、5B及5C，第一柱(最左側)代表媒劑；第二柱(最右側)代表胎盤幹細胞。 圖6A-6B顯示，在同側坐骨神經處在第8天，CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞(PSC)抑制IL-17 mRNA(A)及蛋白質(B)表現。*P<0.05，相對於媒劑。 圖7A-7D顯示，在第8天，CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞抑制免疫細胞浸潤至同側坐骨神經中。(A)：胎盤幹細胞抑制巨噬細胞浸潤(Emr1)及活化(CD68)。(B)：胎盤幹細胞抑制樹突細胞浸潤(CD11c)及活化(CD80、IL-12b)。(C)：胎盤幹細胞抑制T細胞浸潤(CD3d)及活化(CD69)。(D)：對坐骨神經單細胞懸浮液之流式細胞術分析顯示，胎盤幹細胞抑制T細胞(CD3)及巨噬細胞(ED2)浸潤。*P<0.05，相對於媒劑。對於圖7A、7B及7C，第一柱(最左側)代表媒劑；第二柱(最右側)代表胎盤幹細胞。對於圖7D，第一柱(最左側)代表原初細胞；中間柱代表媒劑；且第三柱(最右側)代表胎盤幹細胞。 圖8A-8L顯示，在第8天，CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞抑制發炎性浸潤至同側坐骨神經中。正常動物、媒劑治療動物及胎盤幹細胞治療動物中之H&E染色(A-C)、CD68(D-F)、CD8(G-I)及CD4(J-L)。在A、B及C中，箭頭指示神經束膜；星號指示神經外膜。放大率100x，比例尺200 mM。 圖9顯示，在第8天，CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞抑制同側坐骨神經中Ccl2、Ccl12及Cxcl1之mRNA表現。第一柱(最左側)代表媒劑；第二柱(最右側)代表胎盤幹細胞。 圖10A-10D繪示在基線、隨後之神經傷害程序(D6)及隨後之治療(D10、D16、D25及D30)時，對大鼠爪之26 g刺激之反應次數。(A)對於由CCI誘導之疼痛，觀察到在投與CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞後疼痛顯著降低。(C)對於由CCI誘導之疼痛，觀察到在投與CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞後疼痛顯著降低。(B、D)繪示對對側爪之效應。 圖11A-11B繪示在基線(BL)、神經損傷程序後(D7)及治療後(D11、D21、D26及D34)，大鼠能保持在旋轉棒上之持續時間(最長180秒)。(A)CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞靜脈內(IV)治療組及對照組。(B)CD10+、CD34-、CD105+、CD200+胎盤幹細胞肌內(IM)治療組及對照組。
权利要求:
Claims (75) [1] 一種治療個體疼痛之方法，其包含向該個體投與治療有效量之胎盤幹細胞，其中該治療有效量係足以引起該疼痛之可檢測改善之量。 [2] 如請求項1之方法，其中該方法另外包含在投與該等胎盤幹細胞之前測定該個體之一或多個第一疼痛等級，及在投與該等胎盤幹細胞之後測定該個體之一或多個第二疼痛等級，其中該治療有效量之胎盤幹細胞使得該一或多個第二疼痛等級與該一或多個第一疼痛等級相比降低。 [3] 如請求項2之方法，其中該一或多個第一疼痛等級及該一或多個第二疼痛等級係由疼痛評估量表測定。 [4] 如請求項4之方法，其中該疼痛評估量表係數字型疼痛強度量表(Numeric Pain Intensity Scale)；疼痛品質評估量表(Pain Quality Assessment Scale)；簡單描述型疼痛強度量表(Simple Descriptive Pain Intensity Scale)；視覺類比量表(Visual Analog Scale)；Wong-Baker臉譜型疼痛分級量表(Wong-Baker FACES Pain Rating Scale)；FLACC量表；CRIES量表；COMFORT量表；或藉由使患者經歷冷、熱或機械刺激誘導之誘發疼痛量度。 [5] 如請求項1之方法，其中該方法另外包含在投與該等胎盤幹細胞之前測定該個體疼痛之一或多個生理指標的第一等級，及在投與該等胎盤幹細胞之後測定該個體疼痛之一或多個生理指標的第二等級，其中該治療有效量之胎盤幹細胞使得該第二等級與該第一等級相比降低。 [6] 如請求項5之方法，其中該疼痛之生理指標係該個體之心跳率。 [7] 如請求項6之方法，其中該個體在該投與後之心跳率低於該個體在該投與前之心跳率。 [8] 如請求項5之方法，其中該疼痛之生理指標係該個體之收縮壓(systolic)。 [9] 如請求項8之方法，其中該個體在該投與後之收縮壓低於該個體在該投與前之收縮壓。 [10] 如請求項5之方法，其中該疼痛之生理指標係該個體之舒張壓(diastolic)。 [11] 如請求項10之方法，其中該個體在該投與後之舒張壓低於該個體在該投與前之舒張壓。 [12] 如請求項1之方法，其中該等胎盤幹細胞係CD10+、CD34-、CD105+胎盤幹細胞。 [13] 如請求項12之方法，其中該等胎盤幹細胞另外係CD200+。 [14] 如請求項12或13之方法，其中該等胎盤幹細胞另外係CD45-及CD90+。 [15] 如請求項12至14中任一項之方法，其中該等胎盤幹細胞另外係CD80-及CD86-。 [16] 如請求項1之方法，其中該等胎盤幹細胞表現CD200且不表現HLA-G；或表現CD73、CD105及CD200；或表現CD200及OCT-4；或表現CD73及CD105且不表現HLA-G。 [17] 如請求項1或12至14中任一項之方法，其中該等胎盤幹細胞係HLA-A,B,C+。 [18] 如請求項1或12之方法，其中該等胎盤幹細胞表現ELOVL2、ST3GAL6、ST6GALNAC5或SLC12A8基因，其表現程度可檢測地高於等數量之骨髓衍生之間質幹細胞(BM-MSCs)。 [19] 如請求項18之方法，其中該等胎盤幹細胞表現ARTS-1、IER3、IL6、KRT18、LRAP、MEST、NFE2L3或TGFB2基因，其表現程度可檢測地高於等數量之BM-MSCs。 [20] 如請求項1之方法，其中該疼痛係神經病性疼痛。 [21] 如請求項20之方法，其中該神經病性疼痛係由糖尿病性神經病變引起。 [22] 如請求項20之方法，其中該神經病性疼痛係由該個體之神經損傷引起。 [23] 如請求項20之方法，其中該神經病性疼痛係由藥物引起。 [24] 如請求項23之方法，其中該藥物係或包含含鉑抗癌藥物。 [25] 如請求項24之方法，其中該含鉑抗癌藥物係或包含奧沙利鉑(oxaliplatin)、卡鉑(carboplatin)或順鉑(cisplatin)。 [26] 如請求項23之方法，其中該藥物係或包含太平洋紫杉醇(paclitaxel)。 [27] 如請求項20之方法，其中該神經病性疼痛係由發炎引起。 [28] 如請求項27之方法，其中該發炎係神經炎。 [29] 如請求項1之方法，其中該疼痛係發炎性疼痛。 [30] 如請求項1之方法，其中該疼痛係骨疼痛。 [31] 如請求項30之方法，其中該骨疼痛與癌症有關或係由癌症引起。 [32] 如請求項1之方法，其中該疼痛係由癌症引起。 [33] 如請求項1至32中任一項之方法，其中該疼痛對類固醇療法無反應。 [34] 如請求項1至32中任一項之方法，其中該疼痛對非類固醇抗炎療法無反應。 [35] 如請求項1至32中任一項之方法，其中該疼痛對類鴉片療法無反應。 [36] 如請求項1至32中任一項之方法，其中該疼痛對鴉片劑療法無反應。 [37] 如請求項1至36中任一項之方法，其中該等胎盤幹細胞經調配以局部投與。 [38] 如請求項1至36中任一項之方法，其中該等胎盤幹細胞經調配以全身性、靜脈內或動脈內投與。 [39] 一種治療有效量之胎盤幹細胞，其用於治療個體之疼痛，其中該治療有效量係足以引起該疼痛之可檢測改善之量。 [40] 如請求項39之胎盤幹細胞，其中該個體在該使用前之疼痛等級及該個體在該使用後之疼痛等級係藉由疼痛評估量表來測定。 [41] 如請求項40之胎盤幹細胞，其中該疼痛評估量表係數字型疼痛強度量表；疼痛品質評估量表；簡單描述型疼痛強度量表；視覺類比量表；Wong-Baker臉譜型疼痛分級量表；FLACC量表；CRIES量表；或COMFORT量表。 [42] 如請求項39之胎盤幹細胞，其中該個體在該使用前之疼痛等級及該個體在該使用後之疼痛等級係藉由疼痛之一或多個身體指標來測定。 [43] 如請求項42之胎盤幹細胞，其中該疼痛之生理指標係該個體之心跳率。 [44] 如請求項43之胎盤幹細胞，其中該個體之心跳率在該使用後低於該使用前。 [45] 如請求項39之胎盤幹細胞，其中該疼痛之生理指標係該個體之收縮壓。 [46] 如請求項45之胎盤幹細胞，其中該個體之收縮壓在該使用後低於該使用前。 [47] 如請求項39之胎盤幹細胞，其中該疼痛之生理指標係該個體之舒張壓。 [48] 如請求項47之胎盤幹細胞，其中該個體之舒張壓在該使用後低於該使用前。 [49] 如請求項39至48中任一項之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞係CD10+、CD34-、CD105+胎盤幹細胞。 [50] 如請求項49之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞另外係CD200+。 [51] 如請求項49或50之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞另外係CD45-及CD90+。 [52] 如請求項49至51中任一項之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞另外係CD80-及CD86-。 [53] 如請求項39至52中任一項之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞表現CD200且不表現HLA-G；或表現CD73、CD105及CD200；或表現CD200及OCT-4；或表現CD73及CD105且不表現HLA-G。 [54] 如請求項39至53中任一項之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞係HLA-A,B,C+。 [55] 如請求項39至55中任一項之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞表現ELOVL2、ST3GAL6、ST6GALNAC5或SLC12A8基因，其表現程度可檢測地高於等數量之骨髓衍生之間質幹細胞(BM-MSCs)。 [56] 如請求項39至56中任一項之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞表現ARTS-1、IER3、IL6、KRT18、LRAP、MEST、NFE2L3或TGFB2基因，其表現程度可檢測地高於等數量之BM-MSCs。 [57] 如請求項39之胎盤幹細胞，其中該疼痛係神經病性疼痛。 [58] 如請求項57之胎盤幹細胞，其中該神經病性疼痛係由糖尿病性神經病變引起。 [59] 如請求項57之胎盤幹細胞，其中該神經病性疼痛係由該個體之神經損傷引起。 [60] 如請求項57之胎盤幹細胞，其中該神經病性疼痛係由藥物引起。 [61] 如請求項60之胎盤幹細胞，其中該藥物係或包含含鉑抗癌藥物。 [62] 如請求項61之胎盤幹細胞，其中該含鉑抗癌藥物係或包含奧沙利鉑、卡鉑或順鉑。 [63] 如請求項61之胎盤幹細胞，其中該藥物係或包含太平洋紫杉醇。 [64] 如請求項57之胎盤幹細胞，其中該神經病性疼痛係由發炎引起。 [65] 如請求項64之胎盤幹細胞，其中該發炎係神經炎。 [66] 如請求項39之胎盤幹細胞，其中該疼痛係發炎性疼痛。 [67] 如請求項39之胎盤幹細胞，其中該疼痛係骨疼痛。 [68] 如請求項67之胎盤幹細胞，其中該骨疼痛與癌症有關或係由癌症引起。 [69] 如請求項39之胎盤幹細胞，其中該疼痛係由癌症引起。 [70] 如請求項39至69中任一項之胎盤幹細胞，其中該疼痛對類固醇療法無反應。 [71] 如請求項39至69中任一項之胎盤幹細胞，其中該疼痛對非類固醇抗炎療法無反應。 [72] 如請求項39至69中任一項之胎盤幹細胞，其中該疼痛對類鴉片療法無反應。 [73] 如請求項39至69中任一項之胎盤幹細胞，其中該疼痛對鴉片劑療法無反應。 [74] 如請求項39至73中任一項之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞經調配以局部投與。 [75] 如請求項39至73中任一項之胎盤幹細胞，其中該等胎盤幹細胞經調配以全身性、靜脈內或動脈內投與。
类似技术:
公开号 | 公开日 | 专利标题 TWI602570B|2017-10-21|使用胎盤幹細胞之疼痛治療 JP2021006041A|2021-01-21|胎盤幹細胞を用いる血管形成 US8828376B2|2014-09-09|Treatment of stroke using isolated placental cells US20120171161A1|2012-07-05|Compositions comprising placental stem cells and platelet rich plasma, and methods of use thereof KR20130092394A|2013-08-20|태반 줄기 세포를 사용한 사르코이드증의 치료 JP2022033938A|2022-03-02|胎盤幹細胞を使用する疼痛の治療 AU2017261610A1|2017-12-07|Treatment of stroke using isolated placental cells CN110402147A|2019-11-01|使用胎盘贴壁细胞治疗淋巴水肿和相关病症 KR20220015489A|2022-02-08|태반 줄기 세포를 사용한 혈관신생
同族专利:
公开号 | 公开日 ES2707579T3|2019-04-04| CA2837871A1|2012-12-06| PT2714059T|2019-02-04| US9040035B2|2015-05-26| WO2012166844A3|2014-05-08| US20120328583A1|2012-12-27| AU2012262273B2|2017-09-14| US20180133261A1|2018-05-17| EP3443968A1|2019-02-20| JP2020023559A|2020-02-13| MX357749B|2018-07-23| AU2012262273A1|2013-05-02| US20160074439A1|2016-03-17| EP2714059A2|2014-04-09| WO2012166844A2|2012-12-06| US20150224148A1|2015-08-13| AU2017276275A1|2018-01-18| US11090339B2|2021-08-17| CN104220081A|2014-12-17| JP2014516988A|2014-07-17| CN113559126A|2021-10-29| JP6104896B2|2017-03-29| US20200023015A1|2020-01-23| JP2017137324A|2017-08-10| DK2714059T3|2019-01-21| PL2714059T3|2019-04-30| MX2013013996A|2014-03-12| EP2714059A4|2015-04-08| TWI602570B|2017-10-21| EP2714059B1|2018-10-03| CA2837871C|2021-12-07|
引用文献:
公开号 | 申请日 | 公开日 | 申请人 | 专利标题 US3862002A|1962-05-08|1975-01-21|Sanfar Lab Inc|Production of physiologically active placental substances| US4060081A|1975-07-15|1977-11-29|Massachusetts Institute Of Technology|Multilayer membrane useful as synthetic skin| US4458678A|1981-10-26|1984-07-10|Massachusetts Institute Of Technology|Cell-seeding procedures involving fibrous lattices| US4485097A|1982-05-26|1984-11-27|Massachusetts Institute Of Technology|Bone-equivalent and method for preparation thereof| US4520821A|1982-04-30|1985-06-04|The Regents Of The University Of California|Growing of long-term biological tissue correction structures in vivo| US4829000A|1985-08-30|1989-05-09|The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services|Reconstituted basement membrane complex with biological activity| US4798824A|1985-10-03|1989-01-17|Wisconsin Alumni Research Foundation|Perfusate for the preservation of organs| US5266480A|1986-04-18|1993-11-30|Advanced Tissue Sciences, Inc.|Three-dimensional skin culture system| US5902741A|1986-04-18|1999-05-11|Advanced Tissue Sciences, Inc.|Three-dimensional cartilage cultures| US5863531A|1986-04-18|1999-01-26|Advanced Tissue Sciences, Inc.|In vitro preparation of tubular tissue structures by stromal cell culture on a three-dimensional framework| US5744347A|1987-01-16|1998-04-28|Ohio University Edison Biotechnology Institute|Yolk sac stem cells and their uses| NZ226750A|1987-10-29|1990-09-26|Amrad Corp Ltd|Immortalisation of neural precursor cells by introducing a retrovirus vector containing a myc-oncogene| US5192553A|1987-11-12|1993-03-09|Biocyte Corporation|Isolation and preservation of fetal and neonatal hematopoietic stem and progenitor cells of the blood and methods of therapeutic use| US5004681B1|1987-11-12|2000-04-11|Biocyte Corp|Preservation of fetal and neonatal hematopoietic stem and progenitor cells of the blood| GB8803697D0|1988-02-17|1988-03-16|Deltanine Research Ltd|Clinical developments using amniotic membrane cells| US5284766A|1989-02-10|1994-02-08|Kao Corporation|Bed material for cell culture| FR2646438B1|1989-03-20|2007-11-02|Pasteur Institut|Procede de remplacement specifique d'une copie d'un gene present dans le genome receveur par l'integration d'un gene different de celui ou se fait l'integration| US5763266A|1989-06-15|1998-06-09|The Regents Of The University Of Michigan|Methods, compositions and devices for maintaining and growing human stem and/or hematopoietics cells| US5605822A|1989-06-15|1997-02-25|The Regents Of The University Of Michigan|Methods, compositions and devices for growing human hematopoietic cells| US6326198B1|1990-06-14|2001-12-04|Regents Of The University Of Michigan|Methods and compositions for the ex vivo replication of stem cells, for the optimization of hematopoietic progenitor cell cultures, and for increasing the metabolism, GM-CSF secretion and/or IL-6 secretion of human stromal cells| US5437994A|1989-06-15|1995-08-01|Regents Of The University Of Michigan|Method for the ex vivo replication of stem cells, for the optimization of hematopoietic progenitor cell cultures, and for increasing the metabolism, GM-CSF secretion and/or IL-6 secretion of human stromal cells| US5635386A|1989-06-15|1997-06-03|The Regents Of The University Of Michigan|Methods for regulating the specific lineages of cells produced in a human hematopoietic cell culture| US5399493A|1989-06-15|1995-03-21|The Regents Of The University Of Michigan|Methods and compositions for the optimization of human hematopoietic progenitor cell cultures| DE69034263D1|1989-07-25|2009-04-02|Cell Genesys Inc|Homologe Rekombination für universelle Donorzellen und chimerische Säugetierzellen| US5464764A|1989-08-22|1995-11-07|University Of Utah Research Foundation|Positive-negative selection methods and vectors| EP0747485B1|1989-11-06|1998-12-02|Cell Genesys, Inc.|Production of proteins using homologous recombination| US5272071A|1989-12-22|1993-12-21|Applied Research Systems Ars Holding N.V.|Method for the modification of the expression characteristics of an endogenous gene of a given cell line| US5061620A|1990-03-30|1991-10-29|Systemix, Inc.|Human hematopoietic stem cell| US5635387A|1990-04-23|1997-06-03|Cellpro, Inc.|Methods and device for culturing human hematopoietic cells and their precursors| WO1991016062A1|1990-04-24|1991-10-31|Norman Ende|Neonatal human blood bank and hematopoietic or immune reconstitutions performed therewith| US5226914A|1990-11-16|1993-07-13|Caplan Arnold I|Method for treating connective tissue disorders| US6010696A|1990-11-16|2000-01-04|Osiris Therapeutics, Inc.|Enhancing hematopoietic progenitor cell engraftment using mesenchymal stem cells| US5733542A|1990-11-16|1998-03-31|Haynesworth; Stephen E.|Enhancing bone marrow engraftment using MSCS| US5811094A|1990-11-16|1998-09-22|Osiris Therapeutics, Inc.|Connective tissue regeneration using human mesenchymal stem cell preparations| US5486359A|1990-11-16|1996-01-23|Osiris Therapeutics, Inc.|Human mesenchymal stem cells| US5837539A|1990-11-16|1998-11-17|Osiris Therapeutics, Inc.|Monoclonal antibodies for human mesenchymal stem cells| US5197985A|1990-11-16|1993-03-30|Caplan Arnold I|Method for enhancing the implantation and differentiation of marrow-derived mesenchymal cells| AU1531492A|1991-02-14|1992-09-15|Rockefeller University, The|Method for controlling abnormal concentration tnf alpha in human tissues| US5192312A|1991-03-05|1993-03-09|Colorado State University Research Foundation|Treated tissue for implantation and methods of treatment and use| US5190556A|1991-03-19|1993-03-02|O.B. Tech, Inc.|Cord cutter sampler| US5744361A|1991-04-09|1998-04-28|Indiana University|Expansion of human hematopoietic progenitor cells in a liquid medium| US5750376A|1991-07-08|1998-05-12|Neurospheres Holdings Ltd.|In vitro growth and proliferation of genetically modified multipotent neural stem cells and their progeny| EP0552380A4|1991-08-08|1995-01-25|Kao Corp|Cell culture support, production thereof, and production of cell cluster using same| EP0529751A1|1991-08-09|1993-03-03|W.R. Grace & Co.-Conn.|Cell culture substrate, test material for cell culture and preparations thereof| WO1993004169A1|1991-08-20|1993-03-04|Genpharm International, Inc.|Gene targeting in animal cells using isogenic dna constructs| DE4128713A1|1991-08-29|1993-03-04|Daimler Benz Ag|Verfahren und anordnung zur messung der traegerfrequenzablage in einem mehrkanaluebertragungssystem| US5704361A|1991-11-08|1998-01-06|Mayo Foundation For Medical Education And Research|Volumetric image ultrasound transducer underfluid catheter system| US5356373A|1991-11-15|1994-10-18|Miles Inc.|Method and apparatus for autologous transfusions in premature infants| EP0627003A1|1991-12-23|1994-12-07|British Bio-Technology Limited|Stem cell inhibiting proteins| WO1993020228A1|1992-03-31|1993-10-14|Toray Industries, Inc.|Novel, physiologically active protein and hemopoietic stem cell growth promoter| US5318025A|1992-04-01|1994-06-07|General Electric Company|Tracking system to monitor the position and orientation of a device using multiplexed magnetic resonance detection| US5552267A|1992-04-03|1996-09-03|The Trustees Of Columbia University In The City Of New York|Solution for prolonged organ preservation| US5460964A|1992-04-03|1995-10-24|Regents Of The University Of Minnesota|Method for culturing hematopoietic cells| AU4543193A|1992-06-22|1994-01-24|Henry E. Young|Scar inhibitory factor and use thereof| US5672499A|1992-07-27|1997-09-30|California Institute Of Technology|Immoralized neural crest stem cells and methods of making| US6001654A|1994-01-28|1999-12-14|California Institute Of Technology|Methods for differentiating neural stem cells to neurons or smooth muscle cells using TGT-β super family growth factors| US5849553A|1992-07-27|1998-12-15|California Institute Of Technology|Mammalian multipotent neural stem cells| US5672346A|1992-07-27|1997-09-30|Indiana University Foundation|Human stem cell compositions and methods| US6174333B1|1994-06-06|2001-01-16|Osiris Therapeutics, Inc.|Biomatrix for soft tissue regeneration using mesenchymal stem cells| SG86980A1|1992-11-16|2002-03-19|Applied Immunesciences|Pluripotential quiescent stem cell population| US5772992A|1992-11-24|1998-06-30|G.D. Searle & Co.|Compositions for co-administration of interleukin-3 mutants and other cytokines and hematopoietic factors| US5654186A|1993-02-26|1997-08-05|The Picower Institute For Medical Research|Blood-borne mesenchymal cells| PT691988E|1993-03-31|2003-02-28|Wellstat Therapeutics Corp|Inibidor da proliferacao de celulas estaminais e suas utilizacoes| GB9308271D0|1993-04-21|1993-06-02|Univ Edinburgh|Method of isolating and/or enriching and/or selectively propagating pluripotential animal cells and animals for use in said method| US5709854A|1993-04-30|1998-01-20|Massachusetts Institute Of Technology|Tissue formation by injecting a cell-polymeric solution that gels in vivo| US5372581A|1993-07-21|1994-12-13|Minneapolis Children's Services Corporation|Method and apparatus for placental blood collection| US5426098A|1993-09-02|1995-06-20|Celtrix Pharmaceuticals, Inc.|Increase in hematopoietic progenitor cells in peripheral blood by transforming growth factor beta| IL107483D0|1993-11-03|1994-02-27|Yeda Res & Dev|Bone marrow transplantation| US5591625A|1993-11-24|1997-01-07|Case Western Reserve University|Transduced mesenchymal stem cells| US6288030B1|1993-12-22|2001-09-11|Amgen Inc.|Stem cell factor formulations and methods| US5942496A|1994-02-18|1999-08-24|The Regent Of The University Of Michigan|Methods and compositions for multiple gene transfer into bone cells| AT265191T|1994-03-14|2004-05-15|Cryolife Inc|Herstellungsverfahren von gewebe zur implantation| US5580724A|1994-03-25|1996-12-03|Board Of Regents, The University Of Texas System|Differential expansion of fetal stem cells in maternal circulation for use in prenatal genetic analysis| ES2206509T3|1994-06-06|2004-05-16|Case Western Reserve University|Biomatriz para la regeneracion de tejidos.| DE4422667A1|1994-06-30|1996-01-04|Boehringer Ingelheim Int|Verfahren zur Herstellung und Züchtung hämatopoetischer Vorläuferzellen| US6103522A|1994-07-20|2000-08-15|Fred Hutchinson Cancer Research Center|Human marrow stromal cell lines which sustain hematopoiesis| US5516532A|1994-08-05|1996-05-14|Children's Medical Center Corporation|Injectable non-immunogenic cartilage and bone preparation| US5840502A|1994-08-31|1998-11-24|Activated Cell Therapy, Inc.|Methods for enriching specific cell-types by density gradient centrifugation| US5827742A|1994-09-01|1998-10-27|Beth Israel Deaconess Medical Center, Inc.|Method of selecting pluripotent hematopioetic progenitor cells| US5665557A|1994-11-14|1997-09-09|Systemix, Inc.|Method of purifying a population of cells enriched for hematopoietic stem cells populations of cells obtained thereby and methods of use thereof| DE69527540T2|1994-11-16|2003-01-30|Amgen Inc|Verwendung von stammzellenfaktor und löslichen interleukin-6-rezeptor zur vermehrung der hämatopoietischen vorläuferzellen| US5914268A|1994-11-21|1999-06-22|National Jewish Center For Immunology & Respiratory Medicine|Embryonic cell populations and methods to isolate such populations| US5874301A|1994-11-21|1999-02-23|National Jewish Center For Immunology And Respiratory Medicine|Embryonic cell populations and methods to isolate such populations| US5789147A|1994-12-05|1998-08-04|New York Blood Center, Inc.|Method for concentrating white cells from whole blood by adding a red cell sedimentation reagent to whole anticoagulated blood| US5736396A|1995-01-24|1998-04-07|Case Western Reserve University|Lineage-directed induction of human mesenchymal stem cell differentiation| US7410773B2|1995-02-02|2008-08-12|Ghazi Jaswinder Dhoot|Method of preparing an undifferentiated cell| US5695998A|1995-02-10|1997-12-09|Purdue Research Foundation|Submucosa as a growth substrate for islet cells| US6011000A|1995-03-03|2000-01-04|Perrine; Susan P.|Compositions for the treatment of blood disorders| US5906934A|1995-03-14|1999-05-25|Morphogen Pharmaceuticals, Inc.|Mesenchymal stem cells for cartilage repair| US5716616A|1995-03-28|1998-02-10|Thomas Jefferson University|Isolated stromal cells for treating diseases, disorders or conditions characterized by bone defects| US6974571B2|1995-03-28|2005-12-13|Thomas Jefferson University|Isolated stromal cells and methods of using the same| ZA963151B|1995-04-19|1997-04-24|St Jude Medical|Matrix substrate for a viable body tissue-derived prosthesis and method for making the same| US5733541A|1995-04-21|1998-03-31|The Regent Of The University Of Michigan|Hematopoietic cells: compositions and methods| US5677139A|1995-04-21|1997-10-14|President And Fellows Of Harvard College|In vitro differentiation of CD34+ progenitor cells into T lymphocytes| AU698551B2|1995-04-27|1998-10-29|Procter & Gamble Company, The|Carrier substrate treated with high internal water phase inverse emulsion made with an organopolysiloxane- polyoxyalkylene emulsifier| US5925567A|1995-05-19|1999-07-20|T. Breeders, Inc.|Selective expansion of target cell populations| US5908782A|1995-06-05|1999-06-01|Osiris Therapeutics, Inc.|Chemically defined medium for human mesenchymal stem cells| US5830708A|1995-06-06|1998-11-03|Advanced Tissue Sciences, Inc.|Methods for production of a naturally secreted extracellular matrix| AU6223296A|1995-06-07|1996-12-30|Novartis Ag|Methods for obtaining compositions enriched for hematopoieti c stem cells and antibodies for use therein| US6306575B1|1995-06-16|2001-10-23|Stemcell Technologies, Inc.|Methods for preparing enriched human hematopoietic cell preparations| US5654381A|1995-06-16|1997-08-05|Massachusetts Institute Of Technology|Functionalized polyester graft copolymers| US5877299A|1995-06-16|1999-03-02|Stemcell Technologies Inc.|Methods for preparing enriched human hematopoietic cell preparations| US5935576A|1995-09-13|1999-08-10|Fordham University|Compositions and methods for the treatment and prevention of neoplastic diseases using heat shock proteins complexed with exogenous antigens| US5800539A|1995-11-08|1998-09-01|Emory University|Method of allogeneic hematopoietic stem cell transplantation without graft failure or graft vs. host disease| US5858782A|1995-11-13|1999-01-12|Regents Of The University Of Michigan|Functional human hematopoietic cells| WO1997018298A1|1995-11-14|1997-05-22|Regents Of The University Of Minnesota|Ex vivo culture of stem cells| US5908784A|1995-11-16|1999-06-01|Case Western Reserve University|In vitro chondrogenic induction of human mesenchymal stem cells| US6337387B1|1995-11-17|2002-01-08|Asahi Kasei Kabushiki Kaisha|Differentiation-suppressive polypeptide| US5716794A|1996-03-29|1998-02-10|Xybernaut Corporation|Celiac antigen| AU731468B2|1996-04-19|2001-03-29|Mesoblast International Sarl|Regeneration and augmentation of bone using mesenchymal stem cells| US6455678B1|1996-04-26|2002-09-24|Amcell Corporation|Human hematopoietic stem and progenitor cell antigen| CA2253724A1|1996-04-26|1997-11-06|Case Western Reserve University|Skin regeneration using mesenchymal stem cells| US5919176A|1996-05-14|1999-07-06|Children's Hospital Medical Center Of Northern California|Apparatus and method for collecting blood from an umbilical cord| HU228769B1|1996-07-24|2013-05-28|Celgene Corp|Substituted 2phthalimides and -1-oxoisoindolines and their use for production of pharmaceutical compositions for mammals to reduce the level of tnf-alpha| US5635517B1|1996-07-24|1999-06-29|Celgene Corp|Method of reducing TNFalpha levels with amino substituted 2--1-oxo-and 1,3-dioxoisoindolines| US5827740A|1996-07-30|1998-10-27|Osiris Therapeutics, Inc.|Adipogenic differentiation of human mesenchymal stem cells| US6358737B1|1996-07-31|2002-03-19|Board Of Regents, The University Of Texas System|Osteocyte cell lines| DK0918746T3|1996-08-12|2003-08-04|Celgene Corp|Immunterapeutiske midler og deres anvendelse til reduktion af cytokinniveauer| US5851984A|1996-08-16|1998-12-22|Genentech, Inc.|Method of enhancing proliferation or differentiation of hematopoietic stem cells using Wnt polypeptides| US5916202A|1996-08-30|1999-06-29|Haswell; John N.|Umbilical cord blood collection| US6227202B1|1996-09-03|2001-05-08|Maulana Azad Medical College|Method of organogenesis and tissue regeneration/repair using surgical techniques| US5945337A|1996-10-18|1999-08-31|Quality Biological, Inc.|Method for culturing CD34+ cells in a serum-free medium| US5919702A|1996-10-23|1999-07-06|Advanced Tissue Science, Inc.|Production of cartilage tissue using cells isolated from Wharton's jelly| US5969105A|1996-10-25|1999-10-19|Feng; Yiqing|Stem cell factor receptor agonists| US6248587B1|1997-11-26|2001-06-19|University Of Southern Cailfornia|Method for promoting mesenchymal stem and lineage-specific cell proliferation| US6335195B1|1997-01-28|2002-01-01|Maret Corporation|Method for promoting hematopoietic and mesenchymal cell proliferation and differentiation| US6152142A|1997-02-28|2000-11-28|Tseng; Scheffer C. G.|Grafts made from amniotic membrane; methods of separating, preserving, and using such grafts in surgeries| US6231880B1|1997-05-30|2001-05-15|Susan P. Perrine|Compositions and administration of compositions for the treatment of blood disorders| AU8476698A|1997-07-03|1999-01-25|Osiris Therapeutics, Inc.|Human mesenchymal stem cells from peripheral blood| US7514074B2|1997-07-14|2009-04-07|Osiris Therapeutics, Inc.|Cardiac muscle regeneration using mesenchymal stem cells| CA2296704C|1997-07-14|2010-10-19|Osiris Therapeutics, Inc.|Cardiac muscle regeneration using mesenchymal stem cells| US6077708A|1997-07-18|2000-06-20|Collins; Paul C.|Method of determining progenitor cell content of a hematopoietic cell culture| US5879318A|1997-08-18|1999-03-09|Npbi International B.V.|Method of and closed system for collecting and processing umbilical cord blood| WO1999011287A1|1997-09-04|1999-03-11|Osiris Therapeutics, Inc.|Ligands that modulate differentiation of mesenchymal stem cells| US5968829A|1997-09-05|1999-10-19|Cytotherapeutics, Inc.|Human CNS neural stem cells| US6093531A|1997-09-29|2000-07-25|Neurospheres Holdings Ltd.|Generation of hematopoietic cells from multipotent neural stem cells| WO1999020740A2|1997-10-23|1999-04-29|Geron Corporation|Methods and materials for the growth of primate-derived primordial stem cells| US6059968A|1998-01-20|2000-05-09|Baxter International Inc.|Systems for processing and storing placenta/umbilical cord blood| US6291240B1|1998-01-29|2001-09-18|Advanced Tissue Sciences, Inc.|Cells or tissues with increased protein factors and methods of making and using same| WO1999041613A1|1998-02-12|1999-08-19|Immunivest|Methods and reagents for the rapid and efficient isolation of circulating cancer cells| EP1062321B1|1998-03-13|2004-12-29|Osiris Therapeutics, Inc.|Uses for humane non-autologous mesenchymal stem cells| ES2258329T3|1998-03-18|2006-08-16|Osiris Therapeutics, Inc.|Celulas madre mesenquimaticas para la prevencion y tratamiento de respuestas inmunes en trasplantes.| US6368636B1|1998-03-18|2002-04-09|Osiris Therapeutics, Inc.|Mesenchymal stem cells for prevention and treatment of immune responses in transplantation| EP1066060B1|1998-04-03|2003-08-13|Osiris Therapeutics, Inc.|Mesenchymal stem cells as immunosuppressants| BR9910251A|1998-05-04|2001-01-02|Point Therapeutics Inc|Estimulação hematopoiética| DE69926639T2|1998-05-07|2006-06-08|University Of South Florida, Tampa|Knochenmarkszellen als quelle von neuronen zur wiederherstellung von gehirn und knochenmark| US6835377B2|1998-05-13|2004-12-28|Osiris Therapeutics, Inc.|Osteoarthritis cartilage regeneration| CA2328425A1|1998-05-22|1999-12-02|Osiris Therapeutics, Inc.|Production of megakaryocytes by co-culturing human mesenchymal stem cells with cd34+ cells| ES2292245T3|1998-05-29|2008-03-01|Osiris Therapeutics, Inc.|Celulas madre mesenquimaticas cd45+ y/o fibroblasto+humanas.| JP4526186B2|1998-06-08|2010-08-18|オシリスセラピューティクス，インコーポレイテッド|造血幹細胞を試験管内で維持する方法と組成物| ES2296413T3|1998-06-08|2008-04-16|Osiris Therapeutics, Inc.|Regulacion de la diferenciacion de celulas madre hematopoyeticas por el uso de celulas madre mesenquimaticas humanas.| ES2330063T3|1998-06-19|2009-12-03|Lifecell Corporation|Matriz tisular acelular particulada.| US6713245B2|1998-07-06|2004-03-30|Diacrin, Inc.|Methods for storing neural cells such that they are suitable for transplantation| WO2000006150A1|1998-07-28|2000-02-10|Synergen Ag|Use of creatine compounds for treatment of bone or cartilage cells and tissues| US5958767A|1998-08-14|1999-09-28|The Children's Medical Center Corp.|Engraftable human neural stem cells| JP3517359B2|1998-09-14|2004-04-12|テルモ株式会社|細胞分離・回収装置および細胞の分離・回収方法| CA2345397A1|1998-09-23|2000-03-30|Mount Sinai Hospital|Trophoblast cell preparations| IL142748D0|1998-11-09|2002-03-10|Univ Monash|Embryonic stem cells| US6548299B1|1999-11-12|2003-04-15|Mark J. Pykett|Lymphoid tissue-specific cell production from hematopoietic progenitor cells in three-dimensional devices| JP2002529073A|1998-11-12|2002-09-10|セルサイエンスセラピューティックスインコーポレーテッド|三次元装置における造血前駆細胞からのリンパ様組織特異的細胞の生成| US6184035B1|1998-11-18|2001-02-06|California Institute Of Technology|Methods for isolation and activation of, and control of differentiation from, skeletal muscle stem or progenitor cells| US6102871A|1998-11-23|2000-08-15|Coe; Rosemarie O.|Blood collection funnel| US6328765B1|1998-12-03|2001-12-11|Gore Enterprise Holdings, Inc.|Methods and articles for regenerating living tissue| ES2224726T3|1998-12-24|2005-03-01|Biosafe S.A.|Sistema de separacion sanguinea indicado en particular para la concentracion de celulas madre hematopoyeticas.| CN100402642C|1999-02-04|2008-07-16|技术研究及发展基金有限公司|维持和扩增造血干细胞和/或祖细胞的方法和仪器| US20030007954A1|1999-04-12|2003-01-09|Gail K. Naughton|Methods for using a three-dimensional stromal tissue to promote angiogenesis| US6423790B1|1999-04-16|2002-07-23|William Marsh Rice University|Biodegradable poly networks cross linked with poly-diacrylate macromers| IN191359B|1999-04-20|2003-11-29|Nat Inst Immunology|| US6328762B1|1999-04-27|2001-12-11|Sulzer Biologics, Inc.|Prosthetic grafts| US20030178031A1|1999-05-07|2003-09-25|Du Pen, Inc.|Method for cancer pain treatment| US6287340B1|1999-05-14|2001-09-11|Trustees Of Tufts College|Bioengineered anterior cruciate ligament| AU4860900A|1999-06-02|2000-12-18|Lifebank Services, L.L.C.|Methods of isolation, cryopreservation, and therapeutic use of human amniotic epithelial cells| US6355699B1|1999-06-30|2002-03-12|Ethicon, Inc.|Process for manufacturing biomedical foams| US6333029B1|1999-06-30|2001-12-25|Ethicon, Inc.|Porous tissue scaffoldings for the repair of regeneration of tissue| PT1226233E|1999-08-05|2011-10-04|Abt Holding Co|Células estaminais adultas multipotentes e métodos para isolamento| US8147824B2|1999-08-05|2012-04-03|Athersys, Inc.|Immunomodulatory properties of multipotent adult progenitor cells and uses thereof| US8075881B2|1999-08-05|2011-12-13|Regents Of The University Of Minnesota|Use of multipotent adult stem cells in treatment of myocardial infarction and congestive heart failure| US7015037B1|1999-08-05|2006-03-21|Regents Of The University Of Minnesota|Multiponent adult stem cells and methods for isolation| US20040072888A1|1999-08-19|2004-04-15|Bennett Brydon L.|Methods for treating inflammatory conditions or inhibiting JNK| US6239157B1|1999-09-10|2001-05-29|Osiris Therapeutics, Inc.|Inhibition of osteoclastogenesis| EP1218489B1|1999-09-24|2009-03-18|Cybios LLC|Pluripotent embryonic-like stem cells, compositions, methods and uses thereof| US6685936B2|1999-10-12|2004-02-03|Osiris Therapeutics, Inc.|Suppressor cells induced by culture with mesenchymal stem cells for treatment of immune responses in transplantation| US6428785B1|1999-10-28|2002-08-06|Immunolytics Inc.|Method and composition for treating prostate cancer| US6280718B1|1999-11-08|2001-08-28|Wisconsin Alumni Reasearch Foundation|Hematopoietic differentiation of human pluripotent embryonic stem cells| AU1778001A|1999-11-17|2001-05-30|University Of Rochester|Human ex vivo immune system| EP1110957A1|1999-12-24|2001-06-27|Applied Research Systems ARS Holding N.V.|Benzazole derivatives and their use as JNK modulators| US6376244B1|1999-12-29|2002-04-23|Children's Medical Center Corporation|Methods and compositions for organ decellularization| US7455983B2|2000-01-11|2008-11-25|Geron Corporation|Medium for growing human embryonic stem cells| CA2397772C|2000-01-12|2007-06-12|Ventana Medical Systems, Inc.|Method for determining the response to cancer therapy| AU4346401A|2000-03-09|2001-09-17|Cryo Cell Int|Human cord blood as a source of neural tissue for repair of the brain and spinalcord| DK1264877T3|2000-03-16|2013-10-28|Cellseed Inc|Celledyrkningsbæremateriale, fremgangsmåde til samdyrkning af celler og samdyrket cellelag opnået derved| US20010038836A1|2000-04-04|2001-11-08|Matthew During|Application of myeloid-origin cells to the nervous system| JP3302985B2|2000-05-12|2002-07-15|株式会社ハイパーマーケティング|消耗品提供システム| WO2001093909A2|2000-06-06|2001-12-13|Glaxo Group Limited|Cancer treatment composition containing an anti-neoplastic agent and a pde4 inhibitor| US6455306B1|2000-06-09|2002-09-24|Transcyte, Inc.|Transfusable oxygenating composition| US20050009876A1|2000-07-31|2005-01-13|Bhagwat Shripad S.|Indazole compounds, compositions thereof and methods of treatment therewith| CA2422852C|2000-09-18|2012-06-26|Organogenesis Inc.|Methods for treating a patient using a bioengineered flat sheet graft prostheses| US7560280B2|2000-11-03|2009-07-14|Kourion Therapeutics Gmbh|Human cord blood derived unrestricted somatic stem cells | US6458810B1|2000-11-14|2002-10-01|George Muller|Pharmaceutically active isoindoline derivatives| AU3929402A|2000-11-22|2002-06-11|Geron Corp|Tolerizing allografts of pluripotent stem cells| US7812169B2|2000-11-30|2010-10-12|The Children's Medical Center Corporation|Method of synthesis of 4-amino-thalidomide enantiomers| US7311905B2|2002-02-13|2007-12-25|Anthrogenesis Corporation|Embryonic-like stem cells derived from post-partum mammalian placenta, and uses and methods of treatment using said cells| ES2548591T3|2001-02-14|2015-10-19|Anthrogenesis Corporation|Placenta post-parto de mamífero, su uso y células madre placentarias de la misma| IL156303D0|2000-12-06|2004-01-04|Robert J Hariri|Method of collecting placental stem cells| EP2314673B1|2001-02-14|2013-07-24|Anthrogenesis Corporation|Post-partum mammalian placenta, its use and placental stem cells therefrom| US20080152629A1|2000-12-06|2008-06-26|James Edinger|Placental stem cell populations| NZ534643A|2002-02-13|2010-06-25|Anthrogenesis Corp|Embryonic-like stem cells derived from post-partum mammalian placenta and uses and methods of treatment using said cells| US7091353B2|2000-12-27|2006-08-15|Celgene Corporation|Isoindole-imide compounds, compositions, and uses thereof| US20030045552A1|2000-12-27|2003-03-06|Robarge Michael J.|Isoindole-imide compounds, compositions, and uses thereof| JP2004529621A|2001-02-14|2004-09-30|ティー ファークト，レオ|多能性成体幹細胞、その起源、それを得る方法および維持する方法、それを分化させる方法、その使用法、ならびにそれ由来の細胞| US6987184B2|2001-02-15|2006-01-17|Signal Pharmaceuticals, Llc|Isothiazoloanthrones, isoxazoloanthrones, isoindolanthrones and derivatives thereof as JNK inhibitors and compositions and methods related| US20020132343A1|2001-03-19|2002-09-19|Clark Lum|System and method for delivering umbilical cord-derived tissue-matched stem cells for transplantation| US20030022358A1|2001-05-29|2003-01-30|Hall Jane H.|Growth of filterable organisms that require non-diffusable media components| US20030044977A1|2001-08-10|2003-03-06|Norio Sakuragawa|Human stem cells originated from human amniotic mesenchymal cell layer| DE10139783C1|2001-08-14|2003-04-17|Transtissue Technologies Gmbh|Zellzusammensetzungen zur Behandlung von Osteoarthrose, sowie Verfahren zu deren Herstellung| US20030044976A1|2001-08-27|2003-03-06|Advanced Cell Technology|De-differentiation and re-differentiation of somatic cells and production of cells for cell therapies| EP1288293A1|2001-08-30|2003-03-05|Norio Sakuragawa|Human neural stem cells originated from human amniotic mesenchymal cell layer| CN1195055C|2001-09-06|2005-03-30|周胜利|从胎盘组织中提取造血干细胞用于建立造血干细胞库的新方法| US20030068306A1|2001-09-14|2003-04-10|Dilber Mehmet Sirac|Medium| US9969980B2|2001-09-21|2018-05-15|Garnet Biotherapeutics|Cell populations which co-express CD49c and CD90| HU0500477A3|2001-11-09|2010-01-28|Artecel Sciences|Methods and compositions for the use of stromal cells to support embryonic and adult stem cells| AT438708T|2001-11-15|2009-08-15|Childrens Medical Center|Verfahren zur isolierung, expansion und differenzierung fötaler stammzellen aus chorionzotte, fruchtwasser und plazenta und therapeutische verwendungen davon| JP3728750B2|2001-11-22|2005-12-21|ニプロ株式会社|培養皮膚及びその製造方法| US7799324B2|2001-12-07|2010-09-21|Geron Corporation|Using undifferentiated embryonic stem cells to control the immune system| JP3934539B2|2001-12-12|2007-06-20|独立行政法人科学技術振興機構|胎盤等由来の成体又は生後組織の前駆細胞| AT464373T|2001-12-21|2010-04-15|Mount Sinai Hospital Corp|Zelluläre zusammensetzungen und verfahren zur deren bereitung und verwendung| US20040018178A1|2002-01-22|2004-01-29|Advanced Cell Technology|Stem cell-derived endothelial cells modified to disrupt tumor angiogenesis| US7736892B2|2002-02-25|2010-06-15|Kansas State University Research Foundation|Cultures, products and methods using umbilical cord matrix cells| US20080299090A1|2002-02-25|2008-12-04|Kansas State University Research Foundation|Use Of Umbilical Cord Matrix Cells| US20030161818A1|2002-02-25|2003-08-28|Kansas State University Research Foundation|Cultures, products and methods using stem cells| WO2003073930A1|2002-03-01|2003-09-12|Christine Ross|Novel utilization of heart rate variability in animals| AU2003267949A1|2002-03-15|2003-12-31|U.S. Government As Represented By The Department Of Veterans Affairs|Methods and compositions using cellular asialodeterminants and glycoconjugates for targeting cells to tissues and organs| US20030187515A1|2002-03-26|2003-10-02|Hariri Robert J.|Collagen biofabric and methods of preparing and using the collagen biofabric| WO2003080822A1|2002-03-27|2003-10-02|Nipro Corporation|Cellules mesenchymales placentaires et leur utilisation medicale| US7498171B2|2002-04-12|2009-03-03|Anthrogenesis Corporation|Modulation of stem and progenitor cell differentiation, assays, and uses thereof| AU2003262187A1|2002-04-12|2003-10-27|Celgene Corporation|Modulation of stem and progenitor cell differentiation, assays, and uses thereof| JP2005536189A|2002-04-12|2005-12-02|セルジーン・コーポレーション|血管新生のモジュレーターの同定方法、それにより見出された化合物および該化合物を使用する治療方法| US20040161419A1|2002-04-19|2004-08-19|Strom Stephen C.|Placental stem cells and uses thereof| EP1497435A4|2002-04-19|2005-07-27|Univ Pittsburgh|PLACENTAL STEM CELLS AND USES| JP2003323558A|2002-05-07|2003-11-14|Hiroyuki Senda|幹細胞取引システム| US20050058641A1|2002-05-22|2005-03-17|Siemionow Maria Z.|Tolerance induction and maintenance in hematopoietic stem cell allografts| GB2388814A|2002-05-23|2003-11-26|Rexam Med Packaging Ltd|Cold sealing polymeric films| AU2003231950A1|2002-05-30|2003-12-19|Celgene Corporation|Modulating cell differentiation and treating myeloproliferative disorders with JNK/MKK inhibitors| US20040033217A1|2002-05-31|2004-02-19|Padmavathy Vanguri|Intraperitoneal delivery of genetically engineered mesenchymal stem cells| TWI278641B|2002-06-24|2007-04-11|Hynix Semiconductor Inc|Semiconductor memory device with reduced package test time| US7422736B2|2002-07-26|2008-09-09|Food Industry Research And Development Institute|Somatic pluripotent cells| AU2003278212B2|2002-07-31|2009-07-09|Centre National De La Recherche Scientifique|Stem cells derived from adipous tissue and differentiated cells derived from said cells| EP1535994A4|2002-08-23|2005-12-07|Srl Inc|HUMAN BONE STEM CELLS| KR100476790B1|2002-09-13|2005-03-16|주식회사 제넨메드|세포 저장 용액과 이를 이용한 동물 세포의 동결 및 저장방법| WO2004028474A2|2002-09-25|2004-04-08|University Of Rochester|Caspase inhibitors as anticancer agents| US20040062753A1|2002-09-27|2004-04-01|Alireza Rezania|Composite scaffolds seeded with mammalian cells| US7189740B2|2002-10-15|2007-03-13|Celgene Corporation|Methods of using 3--piperidine-2,6-dione for the treatment and management of myelodysplastic syndromes| JP2006509770A|2002-11-26|2006-03-23|アンソロジェネシスコーポレーション|細胞治療学、細胞治療単位、およびそれらを利用した治療法| US20050089513A1|2003-10-28|2005-04-28|Norio Sakuragawa|Side population cells originated from human amnion and their uses| PT1594957E|2003-02-11|2010-11-30|John E Davies|Células progenitoras da geleia de wharton do cordão umbilical humano| WO2004071283A2|2003-02-13|2004-08-26|Anthrogenesis Corporation|Use of umbilical cord blood to treat individuals having a disease, disorder or condition| WO2004087896A2|2003-03-31|2004-10-14|Pfizer Products Inc.|Hepatocyte differentiation of stem cells| CN1548529A|2003-05-09|2004-11-24|中国人民解放军军事医学科学院基础医|一种人胎盘间充质干细胞的分离方法| US7875272B2|2003-06-27|2011-01-25|Ethicon, Incorporated|Treatment of stroke and other acute neuraldegenerative disorders using postpartum derived cells| ES2554343T3|2003-06-27|2015-12-18|DePuy Synthes Products, Inc.|Células posparto derivadas de tejido del cordón umbilical y métodos de preparación y uso de las mismas| US20040267099A1|2003-06-30|2004-12-30|Mcmahon Michael D.|Pain assessment user interface| US7569385B2|2003-08-14|2009-08-04|The Regents Of The University Of California|Multipotent amniotic fetal stem cells| AR046123A1|2003-10-17|2005-11-23|Crc For Innovative Dairy Produ|Aislamiento de celulas simil-celulas madre, uso de las mismas| EP1682654A2|2003-11-10|2006-07-26|Amgen Inc.|Methods of using g-csf mobilized c-kit+cells in the production of embryoid body-like cell clusters for tissue repair and in the treatment of cardiac myopathy| KR100560340B1|2003-11-11|2006-03-14|한훈|제대혈로부터 중간엽 줄기세포의 분리 및 배양 방법| US20050118147A1|2003-11-17|2005-06-02|Il-Hoan Oh|Method of using mesenchymal stromal cells to increase engraftment| AU2004293443A1|2003-11-19|2005-06-09|Signal Pharmaceuticals, Llc.|Indazole Compounds and methods of use thereof as protein kinase inhibitors| JP2005151907A|2003-11-27|2005-06-16|Shigeo Saito|胎盤又は羊膜由来ヒト幹細胞及びその樹立方法並びに臓器への分化誘導方法| TWI338714B|2003-12-02|2011-03-11|Cathay General Hospital|Method of isolation and enrichment of mesenchymal stem cells from amniotic fluid| AU2004296765B2|2003-12-02|2011-03-24|Celgene Corporation|Methods and compositions for the treatment and management of hemoglobinopathy and anemia| US8586357B2|2003-12-23|2013-11-19|Viacyte, Inc.|Markers of definitive endoderm| US20050176139A1|2004-01-12|2005-08-11|Yao-Chang Chen|Placental stem cell and methods thereof| US20050266391A1|2004-01-15|2005-12-01|Bennett Brydon L|Methods for preserving tissue| US20080095749A1|2004-03-22|2008-04-24|Sudeepta Aggarwal|Mesenchymal stem cells and uses therefor| EP2298862B1|2004-03-22|2017-08-30|Mesoblast International Sàrl|Mesenchymal stem cells and uses therefor| MXPA06010698A|2004-03-26|2006-12-15|Celgene Corp|Sistemas y metodos para disponer de un banco de celulas madre.| WO2005105992A1|2004-04-21|2005-11-10|New York Eye & Ear Infirmary|Chondrocyte culture formulations| JP2006006249A|2004-06-28|2006-01-12|Hiroshima Univ|羊膜由来細胞の培養方法及びその利用| CN100564518C|2004-07-20|2009-12-02|成都军区昆明总医院|胎盘羊膜细胞提取物及其在间充质干细胞诱导分化中的应用| US7244759B2|2004-07-28|2007-07-17|Celgene Corporation|Isoindoline compounds and methods of making and using the same| WO2006015214A2|2004-07-29|2006-02-09|Steenblock Research Institute, Inc.|Umbilical cord stem cell composition & method of treating neurological diseases| RU2416638C2|2004-08-16|2011-04-20|Селлрисерч Корпорейшн Пте Лтд.|Выделение стволовых клеток/клеток-предшественников из амниотической мембраны пуповины| ES2364878T3|2004-09-03|2011-09-15|Moraga Biotechnology Inc.|Células madre de tipo blastómero totipotenciales no embrionarias y procedimientos de las mismas.| WO2006030442A2|2004-09-16|2006-03-23|Gamida-Cell Ltd.|Methods of ex vivo progenitor and stem cell expansion by co-culture with mesenchymal cells| US7147626B2|2004-09-23|2006-12-12|Celgene Corporation|Cord blood and placenta collection kit| US7909806B2|2004-09-23|2011-03-22|Anthrogenesis Corporation|Cord blood and placenta collection kit| CN102391981B|2004-09-24|2014-08-20|麦索布莱斯特公司|多能扩增间充质前体细胞子代及其应用| US8039258B2|2004-09-28|2011-10-18|Ethicon, Inc.|Tissue-engineering scaffolds containing self-assembled-peptide hydrogels| US20060069009A1|2004-09-28|2006-03-30|Messina Darin J|Treatment of neurological deficits in the striatum or substanta nigra pars compacta| US20060069008A1|2004-09-28|2006-03-30|Sanjay Mistry|Treatment of neurological deficits in the striatum or substanta nigra pars compacta| WO2006058007A2|2004-11-23|2006-06-01|Celgene Corporation|Jnk inhibitors for treatment of cns injury| WO2006068809A2|2004-12-03|2006-06-29|New Jersey Institute Of Technology|Substrate recognition by differentiable human mesenchymal stem cells| US20060166361A1|2004-12-21|2006-07-27|Agnieszka Seyda|Postpartum cells derived from placental tissue, and methods of making, culturing, and using the same| US20060171930A1|2004-12-21|2006-08-03|Agnieszka Seyda|Postpartum cells derived from umbilical cord tissue, and methods of making, culturing, and using the same| PT1835924E|2004-12-23|2013-11-19|Ethicon Inc|Tratamento da doença de parkinson e desordens relacionadas usando células derivadas do pós-parto| EP1831356B1|2004-12-23|2017-01-25|DePuy Synthes Products, Inc.|Postpartum cells derived from umbilical cord tissue, and methods of making and using the same| US20070041943A1|2004-12-29|2007-02-22|Children's Hospital Research|Expression of virus entry inhibitors and recombinant AAV thereof| EP1833494B1|2005-01-07|2016-05-18|Wake Forest University Health Sciences|Regeneration of pancreatic islets by amniotic fluid stem cell therapy| US7642091B2|2005-02-24|2010-01-05|Jau-Nan Lee|Human trophoblast stem cells and use thereof| US20060222634A1|2005-03-31|2006-10-05|Clarke Diana L|Amnion-derived cell compositions, methods of making and uses thereof| US20100028306A1|2005-03-31|2010-02-04|Stemnion, Inc.|Amnion-Derived Cell Compositions, Methods of Making and Uses Thereof| EP2399991B1|2005-04-12|2017-09-27|Mesoblast, Inc.|Isolation of adult multipotential cells by tissue non-specific alkaline phosphatase| WO2006111706A1|2005-04-16|2006-10-26|Axordia Limited|Cytotrophoblast stem cell| CA2606983A1|2005-04-28|2006-11-09|Stemcell Institute Inc.|Method of preparing organ for transplantation| WO2006121043A1|2005-05-09|2006-11-16|Olympus Corporation|間葉系幹細胞の培養方法および生体組織補填体の製造方法| AU2006202209B2|2005-05-27|2011-04-14|Lifescan, Inc.|Amniotic fluid derived cells| WO2006133128A2|2005-06-07|2006-12-14|The Regents Of The University Of California|INHIBITION OF EPAC, PHOSPHOLIPASE Cϵ, AND PHOSPHOLIPASE D TO TREAT PAIN| ZA200800144B|2005-06-10|2010-02-24|Celgene Corp|Human placental collagen compositions, processes for their preparation, methods of their use and kits comprising the compositions| BRPI0612121A2|2005-06-30|2016-09-06|Anthrogenesis Corp|método de reparo de uma membrana timpânica que tenha uma deformidade, e, biotecido de colágeno| EP1919365A2|2005-07-13|2008-05-14|Anthrogenesis Corporation|Ocular plug formed from placenta derived collagen biofabric| WO2007009062A2|2005-07-13|2007-01-18|Anthrogenesis Corporation|Treatment of leg ulcers using placenta derived collagen biofabric| WO2007011693A2|2005-07-14|2007-01-25|Medistem Laboratories, Inc.|Compositions of placentally-derived stem cells for the treatment of cancer| US7923007B2|2005-08-08|2011-04-12|Academia Sinica|Brain tissue damage therapies| EP1915440A4|2005-08-19|2009-11-04|Bio Regenerate Inc|COMPOSITIONS OF CELLS ENRICHED WITH COMBINATIONS OF VARIOUS STRAIN AND PRECURSOR CELL POPULATIONS, METHOD OF USE THEREOF, AND METHOD FOR THE PREPARATION OF PRIVATE BANKS THEREOF| EP1789435B1|2005-09-12|2010-02-24|Industry Foundation of Chonnam National University|A method for production of mature natural killer cell| SI1957633T1|2005-10-13|2014-04-30|Anthrogenesis Corporation|Imunomodulacija z uporabo matičnih celic iz placente| AU2006304274B2|2005-10-13|2012-08-16|Celularity Inc.|Production of oligodendrocytes from placenta-derived stem cells| CN100344757C|2005-10-18|2007-10-24|天津昂赛细胞基因工程有限公司|人胎盘、脐带间充质干细胞库及其构建方法| WO2007046775A1|2005-10-21|2007-04-26|Cellresearch Corporation Pte Ltd|Isolation and cultivation of stem/progenitor cells from the amniotic membrane of umbilical cord and uses of cells differentiated therefrom| WO2007066338A1|2005-12-08|2007-06-14|Ramot At Tel Aviv University Ltd.|Isolated oligodendrocyte-like cells and populations comprising same for the treatment of cns diseases| WO2007070870A1|2005-12-16|2007-06-21|Ethicon, Inc.|Compositions and methods for inhibiting adverse immune response in histocompatibility-mismatched transplantation| ES2391034T3|2005-12-19|2012-11-20|Ethicon, Inc.|Expansión in vitro de células derivadas postparto en frascos rotatorios| CN101479377A|2005-12-22|2009-07-08|简·恩尼斯|来自冷冻的脐带组织的活细胞| JP5599568B2|2005-12-28|2014-10-01|エシコン・インコーポレイテッド|分娩後由来細胞を用いた末梢血管疾患の治療| EP1976978A2|2005-12-29|2008-10-08|Anthrogenesis Corporation|Co-culture of placental stem cells and stem cells from a second source| JP5550235B2|2005-12-29|2014-07-16|アントフロゲネシスコーポレーション|胎盤幹細胞集団| CA2633980A1|2005-12-29|2007-07-12|Anthrogenesis Corporation|Improved composition for collecting and preserving placental stem cells and methods of using the composition| US20070253931A1|2006-01-12|2007-11-01|Osiris Therapeutics, Inc.|Use of mesenchymal stem cells for treating genetic diseases and disorders| US20080286249A1|2006-01-12|2008-11-20|Varney Timothy R|Use of mesenchymal stem cells for treating genetic diseases and disorders| EP3287520A1|2006-01-13|2018-02-28|Mesoblast International Sàrl|Mesenchymal stem cells expressing tnf-alpha receptors| CN100545260C|2006-01-13|2009-09-30|深圳市北科生物科技有限公司|人羊膜间充质干细胞的分离及培养方法及医用组合物| US9944900B2|2006-01-18|2018-04-17|Hemacell Perfusion|Pulsatile perfusion extraction method for non-embryonic pluripotent stem cells| EP1986668B1|2006-01-23|2013-06-12|Athersys, Inc.|Mapc therapeutics without adjunctive immunosuppressive treatment| NZ570614A|2006-01-23|2012-07-27|Athersys Inc|Multipotent adult progenitor cell treatment of brain injuries and diseases| CZ301148B6|2006-01-25|2009-11-18|Univerzita Karlova V Praze|Zpusob pestování lidských mezenchymových kmenových bunek, zejména pro lécbu nehojících se fraktur, a bioreaktor k provádení tohoto zpusobu| WO2007099534A2|2006-03-01|2007-09-07|The Regenerative Medicine Institute|Compostions and populations of cells obtained from the umbilical cord and methods of producing the same| EP1845154A1|2006-04-12|2007-10-17|RNL Bio Co., Ltd.|Multipotent stem cells derived from placenta tissue and cellular therapeutic agents comprising the same| CA2705450A1|2006-04-27|2007-11-08|Cell Therapy Technologies, Inc. Et Al|Stem cells for treating lung diseases| PT2029149T|2006-05-05|2017-08-23|Tissue Regeneration Therapeutics Inc|Células progenitoras imunopriviligiadas e moduladoras| ES2581738T3|2006-05-11|2016-09-07|Hli Cellular Therapeutics, Llc|Método para recolectar células madre de sangre placentaria de cordón umbilical| WO2007136673A2|2006-05-19|2007-11-29|Medistem Laboratories, Inc.|Treatment of disc degenerative disease and compositions for same| US20080050814A1|2006-06-05|2008-02-28|Cryo-Cell International, Inc.|Procurement, isolation and cryopreservation of fetal placental cells| WO2007146106A2|2006-06-05|2007-12-21|Cryo- Cell International, Inc.|Procurement, isolation and cryopreservation of maternal placental cells| EP2035552A2|2006-06-09|2009-03-18|Anthrogenesis Corporation|Placental niche and use thereof to culture stem cells| US20070287176A1|2006-06-13|2007-12-13|Alireza Rezania|Chorionic villus derived cells| US8475788B2|2006-06-14|2013-07-02|Stemnion, Inc.|Methods of treating spinal cord injury and minimizing scarring| US8372797B2|2006-06-22|2013-02-12|Creative Medical Health, Inc.|Treatment of erectile dysfunction by stem cell therapy| AU2007297575A1|2006-06-26|2008-03-27|Lifescan, Inc.|Pluripotent stem cell culture| US8980630B2|2006-06-28|2015-03-17|Rutgers, The State University Of New Jersey|Obtaining multipotent amnion-derived stem cell from amniotic membrane tissue without enzymatic digestion| US7993918B2|2006-08-04|2011-08-09|Anthrogenesis Corporation|Tumor suppression using placental stem cells| US20090081171A1|2006-08-11|2009-03-26|Yu-Show Fu|Cell system for alleviating syndromes of Parkinson's disease in a mammal| WO2008021391A1|2006-08-15|2008-02-21|Anthrogenesis Corporation|Umbilical cord biomaterial for medical use| US20080050347A1|2006-08-23|2008-02-28|Ichim Thomas E|Stem cell therapy for cardiac valvular dysfunction| US20120269774A1|2006-09-21|2012-10-25|Medistem Laboratories, Inc|Allogeneic stem cell transplants in non-conditioned recipients| WO2008042441A1|2006-10-03|2008-04-10|Anthrogenesis Corporation|Use of umbilical cord biomaterial for ocular surgery| US8071135B2|2006-10-04|2011-12-06|Anthrogenesis Corporation|Placental tissue compositions| KR20160093739A|2006-10-06|2016-08-08|안트로제네시스 코포레이션|천연 태반 콜라겐 조성물| EP2084268B1|2006-10-23|2018-09-26|Celularity, Inc.|Methods and compositions for treatment of bone defects with placental cell populations| US9102915B2|2006-11-13|2015-08-11|DePuy Synthes Products, Inc.|In vitro expansion of postpartum-derived cells using microcarriers| WO2008060037A1|2006-11-15|2008-05-22|Seoul National University Industry Foundation|Method for the simultaneous primary-isolation and expansion of endothelial stem/progenitor cell and mesenchymal stem cell derived from mammal including human umbilical cord| US8241621B2|2006-12-18|2012-08-14|Medistem Laboratories|Stem cell mediated treg activation/expansion for therapeutic immune modulation| CN101210232B|2006-12-28|2012-07-18|天津昂赛细胞基因工程有限公司|一种间充质干细胞保存液| US10494607B2|2007-02-12|2019-12-03|Celularity, Inc.|CD34+,CD45−placental stem cell-enriched cell populations| EP2915537A3|2007-02-12|2015-10-28|Anthrogenesis Corporation|Treatment of inflammatory diseases using placental stem cells| US20080305148A1|2007-03-19|2008-12-11|National Yang Ming University|Treatment of spinal injuries using human umbilical mesenchymal stem cells| US20100172830A1|2007-03-29|2010-07-08|Cellx Inc.|Extraembryonic Tissue cells and method of use thereof| US20080254005A1|2007-04-06|2008-10-16|Medistem Labortories|Stem Cell Therapy for the Treatment of Autism and Other Disorders| WO2009008928A2|2007-04-13|2009-01-15|Stemnion, Inc.|Methods for treating nervous system injury and disease| US20080260703A1|2007-04-23|2008-10-23|Medistem Labortories|Treatment of Insulin Resistance and Diabetes| US9205112B2|2007-04-23|2015-12-08|Creative Medical Health, Inc.|Combination treatment of cardiovascular disease| WO2008129563A2|2007-04-23|2008-10-30|Stempeutics Research Private Limited,|Human mesenchymal stem cells and preparation thereof| US20080279956A1|2007-05-09|2008-11-13|Tung-Ho Lin|Method for collecting a live placenta cord stem cell| WO2008148105A1|2007-05-25|2008-12-04|Medistem Laboratories, Inc.|Endometrial stem cells and methods of making and using same| WO2008152640A2|2007-06-13|2008-12-18|Pluristem Ltd.|Three dimensional biocompatible scaffolds for ex-vivo expansion and transplantation of stem cells| US20080311087A1|2007-06-15|2008-12-18|Anna Gosiewska|Human Umbilical Tissue-Derived Cell Compositions for the Treatment of Incontinence| WO2008156659A1|2007-06-18|2008-12-24|Children's Hospital & Research Center At Oakland|Method of isolating stem and progenitor cells from placenta| US20100226976A1|2007-07-11|2010-09-09|Marcelle Machluf|Encapsulated mesenchymal stem cells and uses thereof| US20090016999A1|2007-07-13|2009-01-15|Michael Cohen|Embryonic cell compositions for wound treatment| EP2581441A1|2007-08-09|2013-04-17|Genzyme Corporation|Method of treating autoimmune disease with mesenchymal stem cells| KR101039235B1|2007-08-29|2011-06-07|메디포스트|제대혈 유래 간엽줄기세포를 포함하는 인터루킨-8 또는지알오-알파 발현 세포가 관련된 질병의 진단, 예방 또는치료용 조성물| WO2009035612A2|2007-09-11|2009-03-19|The University Of Miami|Multilineage-inducible cells and uses thereof| AU2008201946B2|2007-09-13|2014-07-03|Librach, Clifford L|Method of Isolation and Use of Cells Derived From First Trimester Umbilical Cord Tissue| PT2200622E|2007-09-19|2012-11-06|Pluristem Ltd|Células aderentes provenientes de tecido adiposo ou placentário e respetiva utilização terapêutica| US7615374B2|2007-09-25|2009-11-10|Wisconsin Alumni Research Foundation|Generation of clonal mesenchymal progenitors and mesenchymal stem cell lines under serum-free conditions| KR20200043517A|2007-09-26|2020-04-27|안트로제네시스 코포레이션|인간 태반 관류액으로부터의 혈관형성 세포| NZ584458A|2007-09-28|2012-09-28|Anthrogenesis Corp|Tumor suppression using human placental perfusate and human placenta-derived intermediate natural killer cells| WO2009046346A2|2007-10-04|2009-04-09|Medistem Laboratories, Inc.|Stem cell therapy for weight loss| WO2009046377A2|2007-10-04|2009-04-09|Medistem Laboratories, Inc.|Compositions and methods of stem cell therapy for autism| CN102036688B|2007-10-05|2014-07-02|伊西康公司|使用人脐带组织来源的细胞进行肾脏组织的修复和再生| WO2009052132A1|2007-10-15|2009-04-23|Children's Medical Center Corporation|Human amniotic fluid derived mesenchymal stem cells| KR20200028045A|2007-11-07|2020-03-13|안트로제네시스 코포레이션|조산 합병증의 치료에 있어서의 제대혈의 용도| EP2217250A4|2007-11-09|2011-01-05|California Inst Of Techn|IMMUNOREGULATORY COMPOUNDS AND RELATED COMPOSITIONS AND METHODS| BRPI0821489A2|2007-12-27|2015-06-16|Ethicon Inc|Tratamento de degeneração do disco intervetebral com o uso de células derivadas de tecido de cordão umbilical humano| TW200927927A|2007-12-31|2009-07-01|Univ Kaohsiung Medical|Stem cell medium| US20090186006A1|2008-01-16|2009-07-23|Murphy Michael P|Placental vascular lobule stem cells| US8685728B2|2008-01-31|2014-04-01|Rutgers The State University Of New Jersey|Kit containing stem cells and cytokines for use in attenuating immune responses| US20090214484A1|2008-02-22|2009-08-27|Nikolay Mironov|Stem cell therapy for the treatment of central nervous system disorders| WO2009134532A2|2008-03-07|2009-11-05|The Trustees Of Columbia University In The City Of New York|Homing in mesenchymal stem cells| US20090232781A1|2008-03-13|2009-09-17|Yu-Show Fu|Treatment of liver diseases through transplantation of human umbilical mesenchymal stem cells| US20090232782A1|2008-03-14|2009-09-17|Yu-Show Fu|Method for treating brain ischemic injury through transplantation of human umbilical mesenchymal stem cells| CN101270349A|2008-03-20|2008-09-24|浙江大学|胎盘间充质干细胞分离和体外扩增培养方法| US20090291061A1|2008-05-21|2009-11-26|Riordan Neil H|Stem cell therapy for blood vessel degeneration| CA2725637A1|2008-05-27|2009-12-03|Pluristem Ltd.|Methods of treating inflammatory colon diseases| TWI438275B|2008-06-11|2014-05-21|Healthbanks Biotech Co Ltd|促進幹細胞分化為胰島素製造細胞的方法| CN102065891A|2008-06-16|2011-05-18|伊缪诺金公司|新型协同效应| US8216997B2|2008-08-14|2012-07-10|Acceleron Pharma, Inc.|Methods for increasing red blood cell levels and treating anemia using a combination of GDF traps and erythropoietin receptor activators| WO2010021715A1|2008-08-20|2010-02-25|Anthrogenesis Corporation|Treatment of stroke using isolated placental cells| WO2010021714A2|2008-08-20|2010-02-25|Anthrogenesis Corporation|Improved cell composition and methods of making the same| ES2552556T3|2008-08-22|2015-11-30|Anthrogenesis Corporation|Métodos y composiciones para el tratamiento de defectos óseos con poblaciones de células placentarias| WO2010026574A2|2008-09-02|2010-03-11|Pluristem Ltd.|Adherent cells from placenta tissue and use thereof in therapy| BRPI0922184A2|2008-11-19|2020-08-18|Anthrogenesis Corporation|célula isolada, população isolada de células, matriz ou estrutura sintética permanente ou decelularizada degradável, e , método para tratar um indivíduo| WO2010060031A1|2008-11-21|2010-05-27|Anthrogenesis Corporation|Treatment of diseases, disorders or conditions of the lung using placental cells| JP5646502B2|2008-12-19|2014-12-24|デピュイ・シンセス・プロダクツ・エルエルシーＤｅＰｕｙ Ｓｙｎｔｈｅｓ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ， ＬＬＣ|神経因性疼痛を治療するための臍帯組織由来細胞| US20100323446A1|2009-06-05|2010-12-23|Jill Renee Barnett|Method of collecting placental cells| US20100311036A1|2009-06-09|2010-12-09|University Of South Carolina|Methods for Augmentation of Cell Cryopreservation| JP2012531916A|2009-07-02|2012-12-13|アンソロジェネシスコーポレーション|支持細胞を用いない赤血球の生産方法| CA2787992A1|2010-01-26|2011-08-04|Anthrogenesis Corporation|Treatment of bone-related cancers using placental stem cells| US20110280849A1|2010-03-26|2011-11-17|Anthrogenesis Corporation|Tumor suppression using human placenta-derived intermediate natural killer cells and immunomodulatory compounds| KR20190076060A|2010-04-07|2019-07-01|안트로제네시스 코포레이션|태반 줄기 세포를 사용한 혈관신생| TW201138792A|2010-04-08|2011-11-16|Anthrogenesis Corp|Treatment of sarcoidosis using placental stem cells| KR20190108599A|2010-07-13|2019-09-24|안트로제네시스 코포레이션|천연 킬러 세포의 생성 방법| WO2012092420A2|2010-12-30|2012-07-05|Anthrogenesis Corporation|Methods for cryopreserving and encapsulating cells| WO2012092458A2|2010-12-30|2012-07-05|Anthrogenesis Corporation|Compositions comprising placental stem cells and platelet rich plasma, and methods of use thereof| US20120171180A1|2010-12-30|2012-07-05|Sascha Abramson|Compositions comprising amnion derived adherent cells and platelet-rich plasma| AU2011352036A1|2010-12-31|2013-07-18|Anthrogenesis Corporation|Enhancement of placental stem cell potency using modulatory RNA molecules| AU2012262273B2|2011-06-01|2017-09-14|Celularity Inc.|Treatment of pain using placental stem cells| MX2014000567A|2011-07-15|2014-05-01|Anthrogenesis Corp|Tratamiento de lesion por radiacion utilizando celulas adherentes derivadas del amnios.|ES2548591T3|2001-02-14|2015-10-19|Anthrogenesis Corporation|Placenta post-parto de mamífero, su uso y células madre placentarias de la misma| CN104873956B|2005-09-27|2019-04-23|组织技术公司|羊膜制品和纯化的组合物及其使用方法| JP5550235B2|2005-12-29|2014-07-16|アントフロゲネシスコーポレーション|胎盤幹細胞集団| NZ584458A|2007-09-28|2012-09-28|Anthrogenesis Corp|Tumor suppression using human placental perfusate and human placenta-derived intermediate natural killer cells| JP2012531916A|2009-07-02|2012-12-13|アンソロジェネシスコーポレーション|支持細胞を用いない赤血球の生産方法| KR20190076060A|2010-04-07|2019-07-01|안트로제네시스 코포레이션|태반 줄기 세포를 사용한 혈관신생| TW201138792A|2010-04-08|2011-11-16|Anthrogenesis Corp|Treatment of sarcoidosis using placental stem cells| KR20190108599A|2010-07-13|2019-09-24|안트로제네시스 코포레이션|천연 킬러 세포의 생성 방법| AU2011352036A1|2010-12-31|2013-07-18|Anthrogenesis Corporation|Enhancement of placental stem cell potency using modulatory RNA molecules| AU2012262273B2|2011-06-01|2017-09-14|Celularity Inc.|Treatment of pain using placental stem cells| US9925221B2|2011-09-09|2018-03-27|Celularity, Inc.|Treatment of amyotrophic lateral sclerosis using placental stem cells| KR20150091037A|2012-06-26|2015-08-07|러스티 프라퍼티 홀딩스 피티와이 리미티드|두통 빈도 및/또는 중증도를 낮추기 위한 조성물 및 방법| US9763983B2|2013-02-05|2017-09-19|Anthrogenesis Corporation|Natural killer cells from placenta| US10039792B1|2013-03-16|2018-08-07|Brahm Holdings, Llc|Methods for the treatment of inflammation and pain using human birth tissue material composition| US20150246074A1|2014-02-28|2015-09-03|The Board Of Trustees Of The University Of Illinois|Methods of attenuating opioid tolerance| JP2016008198A|2014-06-24|2016-01-18|国立大学法人名古屋大学|間質性膀胱炎の治療| EP3349771A4|2015-09-15|2019-04-24|Celularity, Inc.|TREATMENT OF DIABETIC PERIPHERAL NEUROPATHY USING PLACENTAL CELLS| WO2018039526A1|2016-08-25|2018-03-01|Wright State University|Treatment of neurodegenerative disorders and pain| US11085019B2|2019-05-06|2021-08-10|Accelerated Biosciences Corp.|Precursory regulatory cytotrophoblast cells and uses thereof|
法律状态:
优先权:
[返回顶部]
申请号 | 申请日 | 专利标题 US201161492314P| true| 2011-06-01|2011-06-01|| US201161548663P| true| 2011-10-18|2011-10-18|| US201261594985P| true| 2012-02-03|2012-02-03|| 相关专利
Sulfonates, polymers, resist compositions and patterning process
Washing machine
Washing machine
Device for fixture finishing and tension adjusting of membrane
Structure for Equipping Band in a Plane Cathode Ray Tube
Process for preparation of 7 alpha-carboxyl 9, 11-epoxy steroids and intermediates useful therein an
国家/地区
|